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【求助】Ni柱纯化His蛋白 蛋白与柱不结合 柱上复性的建议
【求助】Ni柱纯化His蛋白 蛋白与柱不结合 柱上复性的建议
我现在用Ni柱纯化his蛋白,想做柱上复性,遇到的问题如下。
收集各步洗涤的溶液,检测结果发现在蛋白加到柱子上以后就很多蛋白没有结合就流了下来,第一次洗涤溶液中蛋白量也不少,之后的几次洗涤液中蛋白含量微或无(因为想做柱上复性,在洗脱前做梯度洗涤),洗脱液中基本无蛋白或者及微量蛋白。
问题就是:his蛋白不能与Ni柱结合的可能原因?解决办法?
另外,对于柱上复性,有什么好的建议么?
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最新回复
66+77 (2013-6-08 11:36:21)
你的描述就是蛋白和填料没结合或是结合很弱呗。那可能的原因就太多了。首先,蛋白表达及填料、层析系统的使用是否正确(呵呵,不要生气哦);其次,我觉得上样时,样品pH调节的是否合适,pH太低结合会弱哦,是否有影响结合的游离氨基酸,是否由于抗氧化剂添加过多导致Ni 2+ 被还原,总之可能性很多啦;最后推荐你好好看看Ni填料的说明书,如果用的是老外的填料,那就更好了,里面的troubleshooting会告诉你很多东西。我们用的QIAGEN的填料,说明书很详细,从表达到纯化都有。
yes4 (2013-6-08 11:37:24)
另外,我看见有的帖子说,有点蛋白本身不适合Ni柱纯化,不知道这种情况多不多,怎样判断这种情况呢
vvmmoy (2013-6-08 11:37:52)
说到组氨酸tag,我又想到一点,不知道你是否在缓冲液中添加了少量的去垢剂,如果没有,可以加2%的triton或是Tween试试,这样可以防止杂蛋白与目的蛋白的interaction。而如果杂蛋白和目的蛋白间由于interaction而附着在一起 ,导致His-tag被掩盖,也会使亲和吸附变弱。
还有一点就是看看填料的颜色。如果发白,就是脱镍了,要是发灰,就是Ni2+ 被还原了。都会使吸附减弱
我想最好能把你做得蛋白的种类,分子量、二级结构等说一下,可能能得到更多的帮助
hulu呼噜 (2013-6-08 11:38:32)
蛋白分子量:104KD
培养宿主:BL21(DE3)
载体 p ET 30a
包含体裂解液成分:50mM Tris-Hcl Ph8.0
1 mM EDTA, 100 mMNaCl, 8M 尿素,10 mMDTT, 0.1 mM PMSF
裂解液的pH值是否也要调节到7.4左右呢?
rxcc33 (2013-6-08 11:38:58)
EDTA(EGTA)<1mM
DTT<1mM
Triton Tween<2%
SDS<0.3%
否则会影响蛋白的结合
applebook=213 (2013-6-08 11:40:09)
问一下大家谁做过NI柱纯化啊?我也正准备做啊,还没买NI柱啊,哪个公司的好用啊?
xiaoxiaoniao (2013-6-08 11:40:43)
培养宿主:BL21(DE3)
载体 p ET 30a
包含体裂解液成分:50mM Tris-Hcl Ph8.0
1 mM EDTA, 100 mMNaCl, 8M 尿素,10 mMDTT, 0.1 mM PMSF
“1 mM EDTA” 会螯合掉Ni离子;
“10 mMDTT”会还原Ni离子
裂解液的pH值是否也要调节到7.4左右呢?
wmp1234 (2013-6-08 11:41:11)
威格拉斯的Ni-agarose就挺好用,有10ml和50ml两种,最近刚用,呵呵!
wmp1234 (2013-6-08 11:42:51)
培养宿主:BL21(DE3)
载体 p ET 30a
包含体裂解液成分:50mM Tris-Hcl Ph8.0
1 mM EDTA, 100 mMNaCl, 8M 尿素,10 mMDTT, 0.1 mM PMSF
裂解液的pH值是否也要调节到7.4左右呢?
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其实用PBS和8M尿素即可,pH在7.2-7.4
BOSS2011 (2013-6-08 11:43:12)
plaa (2013-6-08 11:43:34)
wood533 (2013-6-08 11:44:33)
我觉得是你的蛋白表达量太大,而NI柱载量又太小,给了一个挂不上柱子的假象(和我遇到的问题一样),建议你先做个载量实验
vivian4123 (2013-6-08 11:45:25)
不同蛋白结构不同,柱上复性时,方法即使一样,结果也会相差很多的 !
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