查看完整版本请点击这里:
【求助】关于表达量与纯化
最近都在纯化带His标签的重组蛋白,发现了一个问题,就是在纯化重组蛋白时候,通常目的蛋白表达量越高,纯化难度就相对越低,相反,若目的蛋白表达量不是很高,纯化起来经常出现杂带与目的蛋白无法分开的现象,经过Ni柱和离子交换,仍无法达到良好的效果。在此想请教各位,碰到表达量不好,目的蛋白与杂蛋白分不开的情况下,该怎么处理? 【求助】关于表达量与纯化
附图例一张
查看完整版本请点击这里:
【求助】关于表达量与纯化
【求助】关于表达量与纯化
99153352.snap.jpg
最新回复
lgm (2013-6-19 16:14:50)
如果目的蛋白表达量比较小,可以尝试先用饱和硫酸铵法浓缩蛋白,再进行纯化
standup (2013-6-19 16:15:27)
QUOTE:
非常感谢您的回答!不过硫酸铵沉淀法之前试过几遍,发现目的蛋白沉淀后难以复溶,就没继续下去了。lgm (2013-6-19 16:27:41)
QUOTE:
加入低浓度的变性剂不可以么?是怕影响蛋白活性么?下游实验是什么standup (2013-6-19 16:37:16)
QUOTE:
一般做的都是可溶蛋白,不是包涵体,添加变性剂的方法暂不考虑的。下游准备做抗体,不知道有无影响lgm (2013-6-19 16:37:34)
tianmei001 (2013-6-19 16:38:01)
附图例一张
==========================================================================================================
这个是很正常的现象,目的蛋白表达量高,纯化是杂蛋白非特异性吸附则少,得到的目的蛋白的纯度高;相反,如果表达量低,杂蛋白非特异性吸附增加,蛋白的纯度会降低。
一般 目的蛋白如果在37度是可溶的,那就好做点。就你而言,只是用来制备抗体用,所以也可以从包涵体中纯化得到目的蛋白进行抗体制备。
从你的帖子及蛋白胶上看,你的蛋白应该是在37度诱导的吧,而且是可溶的,但目的蛋白的下方有3条杂带,这个应该是降解条带(因为,目的蛋白的上方则没有很明显的杂带)。个人的建议就是,整个纯化过程均在4度进行操作;添加蛋白酶抑制剂;如果还不行,那你可以把诱导的温度降到25-30度左右进行诱导,可以提高目的纯化。
如果以上尝试的有效果,还有一点杂带的话,那你就要优化目的蛋白镍柱纯化的条件,可以适当提高咪唑的浓度(binding buffer)。从蛋白胶看,楼主不是个新手,祝你顺利!
hold住 (2013-6-19 16:40:15)
taoshengyijiu (2013-6-19 16:41:34)
同意降解带的推论,做抗体用包涵体更省事,很多时候包涵体稍加洗涤就可以达到85%以上纯度,直接不用纯化
这个纯度做抗体够了,不要迷信做抗体的蛋白纯度需要90%以上的说法
standup (2013-6-19 16:42:05)
==============================================================
我是先用5%浓度咪唑走5个柱长,再用0%~60%线性浓度刷下来的,不过没分开……
caihong (2013-6-19 16:42:33)
附图例一张
====================================================================================
你好,我要自己做抗体,得先表达蛋白然后再纯化,请问我应该用原核表达还是真核表达呢?具体该怎么操作呢?
standup (2013-6-19 16:43:02)
===============================================================================================
个人建议用原核表达,至于具体操作方面,一般都是做克隆→转载体→提质粒→转化→诱导→纯化,具体步骤应该容易在网上查到
langlang (2013-6-19 16:53:15)
50mM, 100mM, 150mM imidazole 去除不純蛋白質
250 mM imidazole 收集所要蛋白質
【求助】关于表达量与纯化