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【求助】做wb,蛋白是270k,转膜效果不好
做wb,蛋白是270k,用6%的分离胶跑,然后80v湿转1.5h。结果用考马斯亮蓝染胶,用立春红染膜后发现膜上蛋白很少,胶上也没什么蛋白。在转膜缓冲液里放了SDS。不知道为什么。【求助】做wb,蛋白是270k,转膜效果不好
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【求助】做wb,蛋白是270k,转膜效果不好
字体: 小 中 大 | 打印 发表于: 2013-7-01 17:43 作者: 30moonriver 来源: 分析测试百科网
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BOSS2011 (2013-7-01 17:43:34)
首先你的蛋白上样量是多少,可以再跑完胶后直接染色看看,而且我想270的蛋白8%的脚比较好,你转膜的时间有点短,100V2.5h我想比较合适,另外如果BUFFER不对,一定是不行的,转膜效果可以根据蛋白marker的转膜效果直接判断。
mimili_901 (2013-7-01 17:44:06)
30moonriver (2013-7-01 17:44:25)
上样量是50ug,那在buffer中该不该加sds呢?我在转小分子量蛋白的时候没加
2541 (2013-7-01 17:45:25)
分子量270kd本来就是很难电泳转膜的,太大,上样缓冲液里SDS是必须加的,转膜缓冲液也应该有SDS,宝生物的产品目录上推荐的配方2.9g甘氨酸,5.8gtris,0.37gSDS,分子克隆上湿法转移的配方是48mmol/L Tris碱,39mmol/L甘氨酸,20%甲醇,0.0375%SDS,半干转移的配方是24mmol/L Tris碱,192mmol/L甘氨酸,20%甲醇。转移效率受SDS、pH值影响,SDS浓度不应高于0.1%,pH不低于8.0。
270KD的胶应该用8%的分离胶,甚至更低(分子克隆上200以上的推荐5%,够低吧),转膜的时候可以试试恒流300-400MA转2个小时。
sunnyB (2013-7-01 17:45:46)
砖膜的时间太短了,我习惯250mA 转3-3.5小时(280KD的蛋白),效果不错
30moonriver (2013-7-01 17:46:15)
分子量273KD
分子量265KD
分子量120KD
转膜条件是什么啊?
jrwyyplt (2013-7-01 17:46:34)
265kd和273kd的最好是转膜过夜,甲醇浓度15%,不知道你用什么仪器,你可以试着摸摸低电流或者低电压过夜,效果会好些,同时要考虑你的蛋白表达丰度,即上样量的要求。如果有文献支持就最好了,仅供参考。
30moonriver (2013-7-01 17:46:57)
学习了
我的分子是168的 请问伯乐的湿转什么条件好
转膜液什么配方好
langlang (2013-7-01 17:47:16)
第一次听说转膜缓冲液加SDS的,请问原理是什么?
bs4665 (2013-7-01 17:47:48)
12%的胶即可,因为我还要跑其他蛋白。
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