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字体: 小 中 大 | 打印 发表于: 2013-8-03 09:00 作者: 算盘阿星 来源: 分析测试百科网
QUOTE:
原帖由 PINK 于 2013-8-3 09:04 发表 谢谢楼上两位 我对实验技术不太懂 让各位见笑了 我是想测量脊髓组织中的某种神经营养因子蛋白含量, western的话怎么通过灰度来计算到含量呢? 会不会比ng还小呢 多谢 再次请教 您的帮助会让我少走很多弯路 ========== ...
原帖由 算盘阿星 于 2013-8-3 09:06 发表 多谢 我的想法就是:在机体自身能够“代偿”时测定组织内的某种神经营养因子的含量, 然后在机体某种病态时不能自身代偿,所以我想看能不能将这种测得的含量给予不能代偿的机体 ...
最新回复
viviwang1987 (2013-8-03 09:00:57)
呵呵,western最多是半定量,而且问一句,你有这种营养因子的标准品么?否则你的定量从何谈起。
其实,如果想定量,可以考虑RTPCT,间接的通过mRNA来考虑。
如果,你们手头有足够的质谱机时,你老板又足够有钱,可以做标记,可以考虑质谱定量,不过也不是完全准确,但是比western好点,最好是结合western的结果一起说。(这个问题是质谱本身的原理导致的,很难解决)
对于蛋白质的绝对定量,目前没有很完美的办法,但是相对定量用western,质谱,甚至色谱纯化都可以做到(前体是你有这个蛋白的标准品)。
PINK (2013-8-03 09:01:35)
你是指脊髓液中神经营养因子的含量吗?你可以用ELISA的方法进行定量;如果是脊髓组织中,只能用westen的方法了;不过从你的题目中看到--“如含多少微升”没有明白,一般的单位应该是xx ug/ml或者更低 xx ng/ml;用ELISA作一个标准曲线,再计算样本的含量;
算盘阿星 (2013-8-03 09:01:56)
谢谢楼上两位
我对实验技术不太懂
让各位见笑了
我是想测量脊髓组织中的某种神经营养因子蛋白含量,
western的话怎么通过灰度来计算到含量呢?
会不会比ng还小呢
多谢
再次请教
您的帮助会让我少走很多弯路
算盘阿星 (2013-8-03 09:02:20)
另外想问
神经营养因子没有标准品吗?
如bdnf 或gdnf
PINK (2013-8-03 09:02:46)
神经营养因子没有标准品吗?
如bdnf 或gdnf
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标准品肯定是有的,你在CST or santa cruz公司查下。
PINK (2013-8-03 09:04:19)
我对实验技术不太懂
让各位见笑了
我是想测量脊髓组织中的某种神经营养因子蛋白含量,
western的话怎么通过灰度来计算到含量呢?
会不会比ng还小呢
多谢
再次请教
您的帮助会让我少走很多弯路
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单纯地检测组织中的神经营养因子的含量没有太大意义;
western一般会用于检测蛋白水平的变化情况,以及某种修饰的变化情况;你要明白如果仅仅是检测单组织中的含量有什么意义呢?难道你要和标准品的灰度值相比吗?如果它在你的处理中没有变化或者没有参与你的某种处理过程,是没意义的;
至于是多少量,这个就更难说清楚,谁知道是多少ng或者更高或更低,你要查文献才知道;
总体感觉你没有明确的实验设计方案与思路,与你所掌握的背景知识少有很大关系,想小走弯路的最有效的办法是读文献
算盘阿星 (2013-8-03 09:04:49)
QUOTE:
谢谢你的热心指教,我查文献也没有看到有测量神经营养因子在组织中的具体含量的,但是我的实验里就是想知道他的具体含量,想根据某种状态下的组织内神经营养因子含量决定外源给予的量。
PINK (2013-8-03 09:05:13)
外源性加入的神经营养因子的量与药物的活性,与受体的结合能力有关;一般情况下可能要用到uM级别;
印象中IGF-I的使用量是10ng/ml,在原代神经元的培养中的加入量;与细胞类型也有一定的关系。不知是否适合的研究需要。
算盘阿星 (2013-8-03 09:06:05)
我的想法就是:在机体自身能够“代偿”时测定组织内的某种神经营养因子的含量,
然后在机体某种病态时不能自身代偿,所以我想看能不能将这种测得的含量给予不能代偿的机体
PINK (2013-8-03 09:06:57)
QUOTE:
如果你想做某种病态下所加入的营养因子的有效浓度,设计思路不是你这样考虑的,应该是如果加入的营养因子有代偿作用或者保护作用,你首先要设计不同的药物浓度加入处理组织中,观察组织或细胞的状态与功能恢复情况,在最佳“代偿”作用或保护作用时的浓度同时又没有明显毒副作用才是最好的浓度。不知回答是否能满足你的设计需求。
XYZQ (2013-8-03 09:08:20)
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为什么脊髓中的组织只能用westen的方法??
【求助】关于蛋白定量