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【求助】WB10KD 做的快吐血了
【求助】WB10KD 做的快吐血了
我是个新手才学2个月,就接到个让我吐血的10KD 先是用的SDS-PAGE 做了无数次 居然出来了一次,但只是昙花一现,再也没出来过了。后面全是连着的一根像是弥散了一样。我甚至在怀疑我那次是不是我要的目的带。
现在用tricine-SDS-PAGE也不见效果 ,连内参都跑的丑陋的很,目的带看不见。各位大侠,请指点一二啊!要是有明确的一套就再好不过了。再次先谢过了。
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最新回复
101010 (2013-8-03 11:19:16)
tricine-SDS-PAGE要延长转膜时间,你可能是电泳没跑好,电泳试剂重新配呗
市井小民 (2013-8-03 11:19:37)
33号 (2013-8-03 11:19:54)
没怎么看得懂啊,到底您的SDS-PAGE跑出来没有?如果是这个都没跑好怎么就做的WB,这不是浪费精力吗?先做好page。同时你的样品是你自己做出来的,样品确定没有问题?总之我觉得老兄您说的不太清楚,想帮助您的同志也没法给你确切的建议!
市井小民 (2013-8-03 11:20:14)
079777chao (2013-8-03 11:20:37)
怎么搞的啊tricine-SDS-PAGE 2KD的都能跑出来的
66258932.jpg
yjf1026 (2013-8-03 11:21:14)
另外你的转膜时间确实短了,100V的话至少得1小时
市井小民 (2013-8-03 11:21:38)
1块胶
WG
1.88ml
30% Gel.sol
2.8ml
3M TrisHCl pH 8.45
2 ml
10% SDS
0.06 ml
10%APS
0.06 ml
TEMED
0.003 ml
Total
6.003 ml
间隙胶配方: 10%
Spacer Gel (10%)
1块胶
dH2O
0.47 ml
30% Gel.sol
0.5 ml
3M TrisHCl pH 8.45
0.5 ml
10% SDS
0.015 ml
10%APS
0.015 ml
TEMED
0.0015 ml
Total
1.5015 ml
浓缩胶配方:4%
Stacking Gel (4%)
1块胶
2×Stacking. buffer
1.5ml
30% Gel.sol
0.75ml
ddH2O
0.75ml
TEMED
4ul
10%APS
40ul
Total
3.44mL
这是配方不知道大伙能看明白不
yjf1026 (2013-8-03 11:21:58)
凝胶配方我没看出有什么问题,不知道其他兄弟能看出来不。 其实你要10KD的话,用SDS-PAGE 15%的胶,100KD的蛋白Marker,应该就能跑出来的,这样操作会比较简单,等跑出条带再做后面的步骤吧,要不浪费时间跟精力啊
市井小民 (2013-8-03 11:22:22)
SDS-PAGE 已经做出来了,只是条带是连着的。
市井小民 (2013-8-03 11:22:59)
过了这久后,我还是回来求助了。不管用SDS-PAGE 还是tricine-SDS-PAGE 实际上已经做出来过,但条带不是好看的那种好好的修修是可以用的了。但老板希望再漂亮,不知道是带着压力做怎么的,重复性很不好。老板又开始怀疑了,我确实有点受不了了。我就想问SDF-1的蛋白真的很难?重复性很差?条带背景深?
KGZ564 (2013-8-03 11:24:04)
减少上样量试试吧
idea2011 (2013-8-03 11:24:22)
我觉得吧,你至少也要15%的胶跑 转一般45min到1h就可以了。在就是用。22的膜,加大上样量。
owanaka (2013-8-03 11:24:40)
15%的胶来跑 一定得等marker 出了5 之后才能停电泳 你是用的湿转? 我觉得小分子量的半干转好些 15v 30min就OK了
yueban-1147 (2013-8-03 11:24:58)
减少上样量试试~~
www.1 (2013-8-03 11:25:20)
条带连着我也觉得上样量太大了。如果非要这么大上样量才能杂交出来,那也只能这么做了吧
市井小民 (2013-8-03 11:25:47)
bring (2013-8-03 11:26:07)
不知道7kd的15%的胶能不能跑出来
H2O (2013-8-03 11:26:23)
抗体为什么要放4℃保存?应该放-20℃吧。
市井小民 (2013-8-03 11:26:44)
说明书上是这样说的啊!我记得放-20的都是加了甘油的吧!
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