查看完整版本请点击这里:
【求助】western blot 背景
最近学做western blot, 实在不顺利。主要是背景太暗,怎么办呢?【求助】western blot 背景
我们是买的蛋白为抗原,一抗是人血清,二抗是羊抗人的。蛋白跑电泳然后转膜,丽春红染色,晾干,切条,然后每条用不同的血清来孵育。做了两三次了,还是背景很深,一片黑。
封闭液:5%的脱脂奶粉,封闭一小时 一抗:1:200,孵育一小时 二抗:1:4000 孵育一小时
请各位专家指点。
哎,再做不好,我就真是不想 live 了
查看完整版本请点击这里:
【求助】western blot 背景
【求助】western blot 背景
最新回复
079777chao (2013-8-14 13:11:18)
会不会上样量少了,每孔300纳克左右的protein 跑胶。
希望有人能回答一下,版主帮帮忙
jujuba (2013-8-14 13:11:38)
你的电泳缓冲液,需要过滤,最好用millipore水配制。
你的转移缓冲液,需要过滤,最好用millipore水配制。
转膜时,所用的器皿,用去污剂充分刷洗后,蒸馏水冲洗干净。
封闭和洗脱的TBS/PBS,用0.45的滤膜过滤一下
不要用镊子去夹膜
idea2011 (2013-8-14 13:12:50)
ffooll (2013-8-14 13:13:10)
可以用蒸馏水,然后普通滤纸过滤,最好细一点的。
转膜的滤纸,如果是PVDF膜,在甲醇里面沉浸15sec,在过滤后的的水里沉浸2min,然后在转移缓冲液里沉浸5min以上。
洗涤滤纸的容器,最好用塑料的。避免用金属镊子接触。
079777chao (2013-8-14 13:13:32)
今天封闭液改成了3%,好像好些了。
wsll (2013-8-14 13:13:54)
降低一抗浓度是关键,分别用不同的一抗浓度试试。
applebook=213 (2013-8-14 13:14:14)
不用金属镊子碰触的话用什么呢,用带PE手套的手可以吗
079777chao (2013-8-14 13:14:38)
为什么要用塑料的,能解释一下吗?
我是把海绵,滤纸,硝酸纤维膜,胶,都用transfer buffer泡到一起了,哎,用的是一个玻璃缸。
cwcwcww (2013-8-14 13:15:31)
QUOTE:
我的也是个人经验,仅供参考。一抗浓度也是个关键点。有些蛋白,例如actin,我的一抗稀释度是1:20000,而有的抗体我的稀释度则是1:50。根据情况自行调整。
塑料容器比较好洗涤,玻璃缸也可以的,但是每次用完之后,用去污剂洗涤,反复冲洗干净沥干备用。
不用镊子,可以用tip头啊。手,包括手套都不要碰到膜。
jujuba (2013-8-14 13:15:58)
tip头是?
079777chao (2013-8-14 13:16:35)
你指的是用枪尖扎住,还是用两个枪尖夹住。
让我试试
刚学做western,每次转移胶的时候,总担心烂胶。呵呵,感觉它就跟凉皮似地
idea2011 (2013-8-14 13:16:54)
tip头,就是那个黄色的200ul枪头啊。
tip头是用来固定膜的,就是用tip头固定膜的一个角,然后倒掉需要更换的溶液。
胶可以用bio-rad那个塑料铲子转移。
079777chao (2013-8-14 13:17:45)
我的蛋白是28kd的,transfer buffer里加不加sds(紧急求助)
我今天做了一下,用的是以前的含sds 的transfer buffer,立春红染色效果不好
而且好像条带发虚,不是很实实在在的一条红带,好像有泡,但我在转膜时特小心的看了,那是可没有夹杂气泡
079777chao (2013-8-14 13:18:15)
真郁闷,人家染色都是一条实在红线,就我的不知怎么搞的。又不想活了。
【求助】western blot 背景