【求助】蛋白在透析过程中产生沉淀,如何解决?

我做的蛋白是一个小分子多肽(结构简单,无2硫键,只有一个a螺旋),4K左右,等电点11,与TRX融合表达,TRX等电点5.4,融合蛋白理论等电点9。融合蛋白经Ni柱纯化,都没有问题。就是在纯化后透析时,老是有沉淀产生。透析内液为20mM PBS+0.5M NaCl(PH7~8),刚开始我是用DW外液直接透析除盐,有沉淀产生。后把外液换为20mM Tris盐酸+0.1M NaCl(PH7~8),4度透析,每8个小时换一次液,换3次,结果第一次换液时肉眼就能看到沉淀,,,无语中,,,不知哪位大侠能够解答,万分感谢!!!
PS:听说加甘油可以防止蛋白聚沉,透析之前我加了5%甘油,但还是有沉淀,是不是甘油加量不够?正常加多少合适?
谢!

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  • dmg (2013-11-09 23:21:36)


    我也遇到过这个问题,不过后来解决了,建议添加至0.5M L-精氨酸,5%甘油,1%甘氨酸,PH调至8.0,另外采用梯度透析法,应当没有问题的。
  • abc816 (2013-11-09 23:22:01)

    QUOTE:

    原帖由 dmg 于 2013-11-9 23:21 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')

    我也遇到过这个问题,不过后来解决了,建议添加至0.5M L-精氨酸,5%甘油,1%甘氨酸,PH调至8.0,另外采用梯度透析法,应当没有问题的。
    添加了精氨酸 甘氨酸的透析液,透析后会对细胞试验由影响吗?
    梯度透析我采用的是
    500mM NaCl,4M 尿素,20mM Tris-Hcl;
    250mM NaCl,2M 尿素,20mM Tris-Hcl;
    125mM NaCl,1M 尿素,20mM Tris-Hcl ;
    也是有沉淀,目前准备添加5%甘油,1L透析液里加50ML甘油,不知道效果会怎么样?
  • dmg (2013-11-09 23:22:20)


    由于我透析后的蛋白做抗原的,所以添加这2种东西没有影响,至于后期做细胞试验,由于精氨酸和甘氨酸浓度导致盐离子浓度很大,估计有一定影响,可以细胞试验前做个超滤或过个柱做个缓冲液置换。
    另外,我做过几十个蛋白,发现L-精氨酸在的情况下,不会产生沉淀,但如没有精氨酸,只添加甘氨酸和甘油情况下还是会有沉淀,说明精氨酸的助溶能力强一些。以上建议仅供参考。
  • 小螺号 (2013-11-09 23:22:38)


    为什么透析内液含盐那么高?是纯化时防止非特异性结合么? 有些蛋白对盐比较敏感,建议纯化用不含盐的缓冲液试试!

    另外有点没看懂,你用镍柱纯化,怎么洗脱的?咪唑还是PH降低?

    精氨酸助溶作用很强,一般精氨酸存在的情况下都不会沉淀,但是去除精氨酸还是会有沉淀,如果用作细胞实验的话不建议用精氨酸,因为首先一点蛋白浓度就不好测了!
  • huifeng0516 (2013-11-09 23:22:57)

    我想问下楼主,精氨酸的分子量是174.20,如果最后用超滤的方法去除精氨酸,选择10KD的超滤管,不知道方法可行不?
  • baidukk (2013-11-09 23:23:20)

    QUOTE:

    原帖由 huifeng0516 于 2013-11-9 23:22 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')
    我想问下楼主,精氨酸的分子量是174.20,如果最后用超滤的方法去除精氨酸,选择10KD的超滤管,不知道方法可行不?
    透析就可以除去,但是你的蛋白可能还会沉淀!
  • baidukk (2013-11-09 23:23:42)

    我也遇到过这个问题,不过后来解决了,建议添加至0.5M L-精氨酸,5%甘油,1%甘氨酸,PH调至8.0,另外采用梯度透析法,应当没有问题的。

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    我还有个问题,加了保护剂沉淀是少了,但是我还要用肠激酶切去Trx及His,发现切不开,是不是保护剂影响了酶切反应,还是因为酶切时蛋白量(0.1ug/ul)太低???疑惑ing
  • yychen (2013-11-09 23:23:59)


    你增加离子强度,或者调整PH试一试,可能不是没切开,是吸附到一起了,或者因为静电作用遮蔽了酶切位点。
  • Ao7 (2013-11-09 23:24:36)


    在不影响后面试验的条件下,可以考虑加一些保护蛋白和氨基酸,另外乙二醇作为保护剂也是不错的
  • c86v (2013-11-09 23:25:07)

    我做的蛋白是一个小分子多肽(结构简单,无2硫键,只有一个a螺旋),4K左右,等电点11,与TRX融合表达,TRX等电点5.4,融合蛋白理论等电点9。融合蛋白经Ni柱纯化,都没有问题。就是在纯化后透析时,老是有沉淀产生。透析内液为20mM PBS+0.5M NaCl(PH7~8),刚开始我是用DW外液直接透析除盐,有沉淀产生。后把外液换为20mM Tris盐酸+0.1M NaCl(PH7~8),4度透析,每8个小时换一次液,换3次,结果第一次换液时肉眼就能看到沉淀,,,无语中,,,不知哪位大侠能够解答,万分感谢!!!
    PS:听说加甘油可以防止蛋白聚沉,透析之前我加了5%甘油,但还是有沉淀,是不是甘油加量不够?正常加多少合适?
    谢!!!!

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    纯化得到目的蛋白是很开心的事,但一般好多情况下,目的蛋白透析时候会出现沉淀,即使不沉淀(幸运),融合蛋白在被蛋白酶酶切后可能目的蛋白也会聚集沉淀,这是由于目的蛋白析出点比较低。
    常规的方法如下从而起到保护蛋白,将融合蛋白透析到含一定盐的溶液中,但盐的浓度不能影响蛋白酶的活性,否则不好后面的酶切实验;至于加入甘油、精氨酸这些分子,会在一定程度上阻碍蛋白之间的分子间,防止蛋白聚集,但有时甘油会影响蛋白的后续试验,而且甘油不易从蛋白溶液中去除。精氨酸价格也不便宜,至于会不会影响蛋白活性,则不是很清楚。
    个人觉得比较好的就是使用分子筛来除盐,个人理解为在除去盐的同时给蛋白自由恢复的空间,蛋白也不聚集。可以酶切前过分子筛,也可以在酶切后过分子筛这取决于你的蛋白。
    祝好运!
  • lixi559 (2013-11-09 23:26:44)


    我也遇到过这种情况,用过柱子脱盐的方法还是好些
  • yysr238 (2013-11-09 23:27:01)

    我们公司也遇到过,建议提高温度到30℃到37℃,蛋白就不易集聚沉淀。
  • tie8 (2013-11-09 23:27:33)

    由于我透析后的蛋白做抗原的,所以添加这2种东西没有影响,至于后期做细胞试验,由于精氨酸和甘氨酸浓度导致盐离子浓度很大,估计有一定影响,可以细胞试验前做个超滤或过个柱做个缓冲液置换。
    另外,我做过几十个蛋白,发现L-精氨酸在的情况下,不会产生沉淀,但如没有精氨酸,只添加甘氨酸和甘油情况下还是会有沉淀,说明精氨酸的助溶能力强一些。以上建议仅供参考。

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    您好,
    我的蛋白切掉tag后浓缩过程中出现沉淀,浓缩前加L-精氨酸是否可能减少沉淀的产生? 我试过加10%的甘油,几乎没有用。另外,您所说的加精氨酸是在开始准备纯化蛋白的时候就加入呢,还是只在透析或中间的某个步骤中加入呢?最后,我想问的是对于用来结晶的蛋白,整个纯化步骤中都加入L-精氨酸会不会对结晶有影响呢?
    谢谢!
  • jujuba (2013-11-09 23:27:57)


    还有一个原因,可能是你透析时蛋白浓度较高。建议透析时,蛋白浓度不要太高,控制在1.5mg/ml 以内。