【求助】western 加ECL后膜周围出现荧光

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最近在跑一个分子量47kd左右的蛋白,内参用的β-actin,每次跑两个胶一板做目的蛋白,一板做内参,两边加样完全相同,除了一抗不同外其它步骤完全相同,但内参显影正常,目的蛋白的那张膜没有目的蛋白显影,膜的边缘经常出现连续的条带,有时是上缘或下缘,有时是整个膜的边缘。请高手赐教。
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最新回复

  • biabiade (2013-11-24 21:19:40)

    内参一般都属于在细胞内比较高表达的,所以很容易检测到,目的蛋白的表达丰度肯定不如actin,内参出来了说明你们的western体系可以正常工作,但针对不同的目的蛋白,抗体的孵育条件(稀释比例及孵育时间),蛋白上样量,以及转膜时间都可能是不同的(当然对于47k的蛋白而言,转膜条件和内参一样就好了)

    膜的边缘发亮,不是很清楚导致这个现象的具体的原因是,但是肯定是说明有非特异性结合的二抗结合上去了,你的膜裁剪的时候用的剪刀干净吗?还有两张膜分别做内参和目的蛋白的时候,是转膜后就分开独立做的吗?洗膜尽量还是在两个盒子里分开进行。
  • jingling845 (2013-11-24 21:20:02)


    剪刀和做内参的用的是一样的,同时剪的,转膜后是分开做的。
  • jingling845 (2013-11-24 21:20:25)


    下面是图片,上面的是内参,下面的是目的蛋白。


    34977946.jpg

  • greenbee (2013-11-24 21:22:19)

    如果荧光强度特别大,例如,在显影前,肉眼都可以看见荧光了,往往显影的时候周围是黑的,而条带处是白的,可能是因为曝光过度引起的。但是往往发生这种情况后,可以看见白色的条带。

    我感觉你的膜背景非常高,周围的黑颜色,都是从切下来的膜的边缘露出来的光,之后曝光了底片导致的。如果是这样的话,你需要解决两个问题,第一,强背景的问题,且是非异性的背景;二,需要降低放光强度。第二个问题好解决,少用ECL就可以,可大比例稀释后再用。第一个问题就很难回答了。

    第一次见你这样的情况,希望有帮助
  • vcve (2013-11-24 21:22:42)

    谢谢,问了好多人都不知道是怎么回事。
  • ffaa (2013-11-24 21:24:19)


    ECL加的太多啦
  • ffaa (2013-11-24 21:24:36)

    如果荧光强度特别大,例如,在显影前,肉眼都可以看见荧光了,往往显影的时候周围是黑的,而条带处是白的,可能是因为曝光过度引起的。但是往往发生这种情况后,可以看见白色的条带。

    我感觉你的膜背景非常高,周围的黑颜色,都是从切下来的膜的边缘露出来的光,之后曝光了底片导致的。如果是这样的话,你需要解决两个问题,第一,强背景的问题,且是非异性的背景;二,需要降低放光强度。第二个问题好解决,少用ECL就可以,可大比例稀释后再用。第一个问题就很难回答了。

    第一次见你这样的情况,希望有帮助

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    大侠你好!我做WB也是整篇可见荧光,很长时间都不淬灭,压片出来也就是个膜的形状。

    但是后来洗掉ECL之后,重新做DAB显色便有条带,请问是不是ECL需要大比例稀释啊?

    而通常大比例稀释是指怎么个稀释法?几倍稀释呢?
  • 101010 (2013-11-24 21:24:57)

    你可以试一下用PBS稀释,我们以前用1:1000稀释,效果还是很好。另外,ECL上膜的时候,ECL的用量尽量少,例如200微升,但是要涂布均匀。你可以先做一个小样试试这样方法可行不
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