【求助】考马斯亮蓝G-250染色法测定蛋白浓度


我采用考马斯亮蓝G-250染色法测定蛋白浓度,
染色液的配制如下:
取考马斯亮蓝G-250 100mg溶于50mL 95 %乙醇中,加100mL 85 %磷酸,加水稀释至1升。

溶液配成后应该显棕红色。我先用乙醇溶解G-250 ,之后加入磷酸,此时溶液是暗红色。但是,当我加入大量超纯水稀释至1L时,溶液竟然变成暗绿色,这是怎么回事?

请教各位。

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最新回复

  • remonte (2013-12-01 22:45:47)

    水中是不是有杂质蛋白污染?
  • glass (2013-12-01 22:46:05)


    我也遇到过你这种情况,但好象对结果影响不大吧,我测的标准曲线R值都超过0.99
  • biabiade (2013-12-01 22:46:25)


    对,对结果影响不大,照样可以染胶,丝毫不会影响敏感性
  • tangxin_80 (2013-12-01 22:46:42)


    我想问一个弱智的 问题,用G-250如何测蛋白的浓度 啊。
  • lorri (2013-12-01 22:47:08)

    转:
    考马斯亮兰法(Bradford法)

    (一)实验原理

    1976年由Bradford建立的考马斯亮兰法(Bradford法),是根据蛋白质与染料相结合的原理设计的。这种蛋白质测定法具有超过其他几种方法的突出优点,因而正在得到广泛的应用。这一方法是目前灵敏度最高的蛋白质测定法。考马斯亮兰G-250染料,在酸性溶液中与蛋白质结合,使染料的最大吸收峰的位置(lmax),由465nm变为595nm,溶液的颜色也由棕黑色变为兰色。经研究认为,染料主要是与蛋白质中的碱性氨基酸(特别是精氨酸)和芳香族氨基酸残基相结合。在595nm下测定的吸光度值A595,与蛋白质浓度成正比。

    Bradford法的突出优点是:

    (1)灵敏度高,据估计比Lowry法约高四倍,其最低蛋白质检测量可达1mg。这是因为蛋白质与染料结合后产生的颜色变化很大,蛋白质-染料复合物有更高的消光系数,因而光吸收值随蛋白质浓度的变化比Lowry法要大的多。

    (2)测定快速、简便,只需加一种试剂。完成一个样品的测定,只需要5分钟左右。由于染料与蛋白质结合的过程,大约只要2分钟即可完成,其颜色可以在1小时内保持稳定,且在5分钟至20分钟之间,颜色的稳定性最好。因而完全不用像Lowry法那样费时和严格地控制时间。

    (3)干扰物质少。如干扰Lowry法的K+、Na+、Mg2+离子、Tris缓冲液、糖和蔗糖、甘油、巯基乙醇、EDTA等均不干扰此测定法。

    此法的缺点是:

    (1)由于各种蛋白质中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同,因此Bradford法用于不同蛋白质测定时有较大的偏差,在制作 标准曲线时通常选用 g—球蛋白为标准蛋白质,以减少这方面的偏差。

    (2)仍有一些物质干扰此法的测定,主要的干扰物质有:去污剂、 Triton X-100、十二烷基硫酸钠(SDS)和0.1N的NaOH。(如同0.1N的酸干扰Lowary法一样)。

    (3)标准曲线也有轻微的非线性,因而不能用Beer定律进行计算,而只能用标准曲线来测定未知蛋白质的浓度。
  • kewanqi2011 (2013-12-01 22:47:37)

    我不是染胶,
    是测定蛋白浓度......


    ==================

    对,对结果影响不大,照样可以染胶,丝毫不会影响敏感性
  • yychen (2013-12-01 22:47:57)


    这是操作流程

    1. 完全溶解蛋白标准品,取10ml稀释至100ml ,使终浓度为0.5mg/ml。蛋白样品在什么溶液中,标准品也宜用什么溶液稀释。
    但是为了简便起见,也可以用0.9%NaCl或PBS稀释标准品。

    2. 将标准品按0, 1, 2, 4, 8, 12, 16, 20微升分别加到96孔板中,加标准品稀释液补足到20微升(一般每个梯度做五个)。

    3. 加适当体积样品到96孔板的样品孔中,加标准品稀释液到20微升。

    4. 各孔加入200微升G250染色液,室温放置3-5分钟。

    5. 用酶标仪测定A595,或560-610nm之间的其它波长的吸光度。

    6. 根据标准曲线计算出样品中的蛋白浓度。
  • newway (2013-12-01 22:48:38)


    楼主 我也遇到了这种问题 觉得测的蛋白含量就不准了 楼主最后是怎么解决的啊