【求助】做双向前一般都用什么方法测蛋白浓度?...


在下为新手,请各位前辈指教。
我想提蛋白后做双向,先用BCA法测蛋白浓度,蛋白稀释8000倍后浓度仍为325.6ug/ml,绝对超出预计的量,不知为什么。我的裂解液配方为尿素8M、硫脲2M、CHAPS4%、PH3-10两性电解质0.5%、DTT为25mM,与说明书中的影响物质对比,只有尿素超过限制,可是稀释后也应该低于3M的要求了,不知是什么影响了该方法,请各位前辈指教。
ps,我用SDS-PAGE跑过所提蛋白,存在明显的条带,应该有蛋白的存在。
另外,大家做双向前一般都用什么方法测蛋白浓度?


[ 本帖最后由 guagua 于 2013-12-7 11:29 编辑 ]
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最新回复

  • lixi559 (2013-12-06 17:32:54)


    325.6ug/ml?哪不是0.3ug/ul?这种程度的蛋白浓度不算高吧?
    甚至说你这个浓度算是低的了 你做双向的话很可能浓度是低 了的
    你的样品体积估计会过大 水化液可能都加不了了
  • guagua (2013-12-06 17:33:15)


    前辈,325.6ug/ml是稀释8000倍后的浓度,我是说原浓度异常高,请各位前辈指点迷津。
    各位前辈是用什么方法测蛋白浓度?Bradford?
  • zsxan1990 (2013-12-06 17:48:05)


    你这个浓度太低了吧
  • lixi559 (2013-12-06 17:48:33)


    LZ确定是样品稀释了8000倍而不是在测量过程中的稀释倍数?
    实在确定不了 就拿样品跑个PAGE看看
    另外如果LZ没有先测原来的样品浓度就直接稀释8000倍了来测的话,我只能说很难理解。。。
  • guagua (2013-12-06 17:50:49)


    回复五楼:因为原样品加入BCA试剂就变成很深的紫色,颜色比标准曲线中最大的还深,测量不出结果,所以只能稀释了再测。我测了原样品、稀释100倍、1000倍、5000倍及8000倍的浓度,只有5000倍及8000倍出结果。PAGE跑过了,有条带。不过做双向需要确定上样量,所以想向前辈们求助。
  • lixi559 (2013-12-06 17:51:18)

    。。。。实在不行 把样品都跑一次 然后对比一下 再修改上样量。。。
    就是很浪费了
  • youyou99 (2013-12-06 17:51:45)


    蛋白抽提试剂中离子成分干扰了BCA的测试
  • kuohao17 (2013-12-06 17:52:10)


    0.3ug/ul的浓度是没有意义的,为什么这么说?因为这个浓度很低,接近检测下限了,可能即使你用水来检测估计也能测出一定浓度出来,呵呵,但是这个信息可以作为参考,你把这个浓度提高10倍左右(即你的原样稀释800倍到1000倍的样子)检测一下,应该会有结果的。另外一个问题是,你的蛋白浓度测定的一些步骤是否有误?如果假设你的稀释8000倍的浓度测定是准确的话,那么原浓度应该是0.3*8000=2400ug/ul=2.4g/ml。这种蛋白浓度是不可能存在的,我们一般提取的蛋白浓度大概是1-10mg/ml的样子,你比常规浓度高1000倍,太吓人了,呵呵!
  • 101010 (2013-12-06 17:52:31)


    (说明书上写的)BCA法测定蛋白浓度需确保EDTA低于10mM,无EGTA,二硫苏糖醇低于1mM,β-巯基乙醇低于0.01%。你的DTT 二硫苏糖醇为25mM的嘛,高于1mM。
  • mamamiya (2013-12-06 17:52:55)


    Bradford法可以不受双向中那些试剂的影响,应该用这种方法。
  • 30moonriver (2013-12-06 17:53:16)


    应该用非干扰型蛋白定量试剂盒