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字体: 小 中 大 | 打印 发表于: 2014-1-09 14:51 作者: xiaoxiaoniao 来源: 分析测试百科网
91119716.snap.jpg
最新回复
one (2014-1-09 14:53:35)
xiaoxiaoniao (2014-1-09 14:53:55)
谢谢楼上的提议。用的是12%的胶。
顺便问一下,为什么目的蛋白分子量不同对应使用不同浓度的分离胶,如果小分子量的蛋白用孔径较大的胶就是会跑得快一点,那么是不是只要我减小电压缩短跑胶时间就可以了呢?
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redbutterfly (2014-1-09 14:54:47)
孔径不一样,分离范围就不一样,扩散程度也不一样
你的目标蛋白分子量是多少呢?12%的分离胶也不算很高
另外样品是不是没有离好心?
xiaoxiaoniao (2014-1-09 14:57:09)
目的分子的分子量为52KD,我是觉得用全蛋白中跑出来的小蛋白怎么会这么少呢,样品40000g30min,不知应该怎么调整?
xiaoxiaoniao (2014-1-09 14:58:27)
lxh031 (2014-1-09 15:01:27)
xiaoxiaoniao (2014-1-09 15:02:04)
这张图没用Marker,煮沸后又离心过的,可能把沉淀吸进去了吧,我用的是细胞,没有细菌碎片。缓冲液会影响什么呢?
ending (2014-1-09 15:05:07)
缓冲液要是pH不对或者用的时间过久离子浓度有改变,可能跑不下来,中间这个孔看,觉得你的胶没跑下来,但是跑胶的时候看溴酚蓝是跑到底了的,还有你配胶的试剂,用别人的看看。
flower-201 (2014-1-09 15:05:31)
gogo (2014-1-09 15:05:56)
你这个图应该还可以继续跑,可以让那些小分子都跑出去,那样你的目的带基本可以分开了。
10几KD的小分子要用tricine电泳。
xingyi08 (2014-1-09 15:07:37)
首先你的上的样品质量有些大,建议下次用这个量的1/2--2/3试试;我跑的蛋白也是50K多点,用8%的分离胶,10mA恒流(如果闲时间长改到15mA也行),这样跑出来的条带效果非常好。另外电泳缓冲液用过5次后建议更换一下,否则影响跑胶效果
tangxin_80 (2014-1-09 15:09:08)
我也遇到过这种情况,用新配的染色液就行了!
【求助】为什么全蛋白跑胶出来的小分子量条带看不见