【求助】阴阳离子柱纯化蛋白(PI=7.6),蛋白纯化不出来


本人有一蛋白,包涵体形式存在,分子量16.7KD,等电点7.6
1.阳离子柱CMFF纯化,将蛋白溶解在9M尿素中,调PH=4.0,BufferA,B,C的PH=4.0,过柱子后,蛋白大部分存在于穿透液中,有部分蛋白挂柱,但是随着Buffer B盐离子浓度提高达到1 M NaCl,只洗下杂蛋白,没有多少目的蛋白,而用NaOH洗柱的时候,能把挂在柱子上的目的蛋白洗脱下来,蛋白挂柱子量太少?挂柱子后用盐洗脱不下来?
2.阴离子柱High Q纯化,将蛋白溶解在9M尿素中,调PH=8.3,BufferA,B,C的PH=8.3,过柱子后,蛋白大部分存在于穿透液中,有部分蛋白挂柱,但是随着Buffer B盐离子浓度提高达到1 M NaCl,只洗下杂蛋白,没有多少目的蛋白,而用NaOH洗柱的时候,能把挂在柱子上的目的蛋白洗脱下来,蛋白挂柱子量太少?挂柱子后用盐洗脱不下来?
两个柱子几乎都是同样的现象,蛋白不是穿透,就是虽然结合在柱子上,但是用Buffer B盐离子浓度提高达到1 M NaCl,洗下来的都是杂蛋白,目的蛋白很少,而用NaOH洗柱的时候,能把挂在柱子上的目的蛋白洗脱下来,请大家分析一下原因,谢谢了。

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最新回复

  • flower-201 (2014-1-22 16:40:55)


    稀释到多少倍上柱 尿素浓度
  • DONT (2014-1-22 16:42:33)



    没有复性 当然在穿过
    你看看是不是应该稀释到0.2M尿素
  • misswu61 (2014-1-22 16:50:38)


    几乎没有进行稀释,里面含有少量DTT,酸溶的加了醋酸后调PH值,碱溶的加了少量Tris调PH值。
    Buffer B,A里面尿素8M
  • flower-201 (2014-1-22 16:53:24)


    没有复性 当然在穿过
    你看看是不是应该稀释到0.2M尿素
  • misswu61 (2014-1-22 16:54:21)

    9M尿素是溶解包涵体的,0.2M尿素是不能溶解包涵体的。我们是要获得纯度比较高的蛋白后在复性,不是复性后在进行纯化的。
  • flower-201 (2014-1-22 16:54:50)

    不懂你在做什么
    我做过8M尿素的southQ 纯化 可以
    但与未加尿素有些差别
    8M尿素的CMFF 不挂柱
    尿素做为离液剂在离子交换中还是有影响的
    蛋白浓度太高 即使纯化好了 复性也是不容易操作的
    蛋白浓缩用超滤或冻干都可以 纯化的目的就是纯化 精纯
    而且上样体积无关 柱体积一定 最大负载一定 洗脱体积是差不多的 何必自寻烦恼
  • misswu61 (2014-1-22 16:55:30)


    谢谢你哈,8M尿素的CMFF 不挂柱?为什么?
    你做包涵体,过离子交换柱,是怎么做的?
  • misswu61 (2014-1-22 16:55:58)


    又作了一次目的蛋白还是不挂住,大家提提意见哈
  • skytree (2014-1-22 16:56:21)


    我的看法,从两方面来分析:
    1、挂柱的目标蛋白——可能尿素并没有将目标蛋白溶解完全。
    这可以从你溶解IB时电泳上清样和沉淀样来估计。表现为溶解上清中虽然有目标蛋白,但在沉淀中仍然有大量目标蛋白不能溶解。这样的话,溶解上清中的目标蛋白很可能仍处于一定的聚集状态,而不是单体。通俗地讲,就是还是颗粒,不具备单体的电荷性质。特别是IB溶解上清只是离心,没有经过过滤时,上样离子交换柱,这些颗粒沉积在柱头,并非真正依赖电荷作用吸附到柱上。提高盐浓度不能洗脱这些沉积颗粒,而用氢氧化钠时,沉积蛋白变为可溶被洗脱。
    2、不挂柱的目标蛋白——可能存在目标蛋白的修饰
    这是经验性的推测。有些蛋白IB表达后,用尿素溶解时,可能会形成尿素修饰,不带电荷的尿素覆盖在蛋白质的表面,从而掩盖蛋白的电荷性质。或在大肠杆菌中表达时,就形成了小分子的表面修饰。
    我多次碰到这种情况,不只是IEC柱不能吸附,其它类型的柱,如金属鳌合柱(目标蛋白有histag)、疏水柱等都不能有效吸附。这类蛋白一般都是疏水性很强的膜蛋白。
    建议在表达载体和诱导条件方面做些改进,拿到可溶性的蛋白表达,再做纯化。
  • misswu61 (2014-1-22 16:56:41)


    蛋白经过离心后上清直接上柱子,上清看起来就是比较粘稠,好像胶体,好像聚集在一起,不是以单体的形式存在,但是经过0.45um的滤膜后,蛋白还是比较粘稠,蛋白经过柱子的时候,大部分还是穿透了,这是为什么呢?希望高人给予解答
    有的时候穿透有两个峰,从穿透的样品看来,第一个峰里几乎没有目的蛋白,第二个峰里目的蛋白很多,那说明柱子上也结合很多蛋白,但是用盐还是洗不下来哈,这是为什么呢?
  • skytree (2014-1-22 16:57:01)


    另一种可能,调节pH时导致样品的电导过高,检查一下。
  • misswu61 (2014-1-22 16:57:25)

    你说的是样品过柱子的时候的电导?还是调完PH值后过柱子之前样品的电导?电导要在多少范围内才不算高呢?具体还有什么原因,您多多提意见,我好好检查一下,谢了哈
  • skytree (2014-1-22 16:58:18)

    做条件探索时,样品的电导一般要小于3ms/cn(AKTA上检测),过柱前后变化不大。同样平衡缓冲液的电导也要小于3ms/cn。甚至有时要求低于1ms/cn。
  • 30moonriver (2014-1-22 16:59:12)


    本人有一蛋白,包涵体形式存在,分子量16.7KD,等电点7.6
    1.阳离子柱CMFF纯化,将蛋白溶解在9M尿素中,调PH=4.0,BufferA,B,C的PH=4.0,过柱子后,蛋白大部分存在于穿透液中,有部分蛋白挂柱,但是随着Buffer B盐离子浓度提高达到1 M NaCl,只洗下杂蛋白,没有多少目的蛋白,而用NaOH洗柱的时候,能把挂在柱子上的目的蛋白洗脱下来,蛋白挂柱子量太少?挂柱子后用盐洗脱不下来?
    2.阴离子柱High Q纯化,将蛋白溶解在9M尿素中,调PH=8.3,BufferA,B,C的PH=8.3,过柱子后,蛋白大部分存在于穿透液中,有部分蛋白挂柱,但是随着Buffer B盐离子浓度提高达到1 M NaCl,只洗下杂蛋白,没有多少目的蛋白,而用NaOH洗柱的时候,能把挂在柱子上的目的蛋白洗脱下来,蛋白挂柱子量太少?挂柱子后用盐洗脱不下来?
    两个柱子几乎都是同样的现象,蛋白不是穿透,就是虽然结合在柱子上,但是用Buffer B盐离子浓度提高达到1 M NaCl,洗下来的都是杂蛋白,目的蛋白很少,而用NaOH洗柱的时候,能把挂在柱子上的目的蛋白洗脱下来,请大家分析一下原因,谢谢了。
    实验方案设计有问题啊!包涵体的纯化不能根据理论的来。你可以尝试一下不同PH下做CM层析,不同PH下做Q层析。摸索清楚初步PH然后优化,同时注意样品的电导不要太高。
  • 30moonriver (2014-1-22 16:59:33)


    蛋白经过离心后上清直接上柱子,上清看起来就是比较粘稠,好像胶体,好像聚集在一起,不是以单体的形式存在,但是经过0.45um的滤膜后,蛋白还是比较粘稠,蛋白经过柱子的时候,大部分还是穿透了,这是为什么呢?希望高人给予解答
    有的时候穿透有两个峰,从穿透的样品看来,第一个峰里几乎没有目的蛋白,第二个峰里目的蛋白很多,那说明柱子上也结合很多蛋白,但是用盐还是洗不下来哈,这是为什么呢?
    层析纯化,蛋白样品是不能过高的,蛋白那么稠在上样时容易沉淀在层析柱上。你的操作步骤没有很好的表述出来,让人不好分析