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【求助】Western 做不出来,请有经验的战友看看怎么回事
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各位战友,我的步骤如下:
1,提蛋白:组织剪碎,放在1*PBS内洗2遍每次3分钟;然后家RIPA及PMSF按照50:1加入组织中,然后匀浆20--40次.随后,放入4度冰箱内30分钟,以后进行离心12000转5--10分钟,之后,提取上清液.-----注:没有超声
2,测蛋白浓度:用G--250考马斯亮蓝在595波长的情况下进行测试.
3,做胶,上样,跑电泳.蛋白是45KD,浓缩胶100V分离胶120V.
4,转膜,用200毫安,50分钟.
5,一抗孵育过夜---HRP标记的
6,显影
结果很令人失望,不知怎么回事,谢谢各位老师指正,多谢.
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最新回复
cj_mondy (2014-2-12 16:12:26)
对了,我的浓缩胶是百分之4的,分离胶百分之10的.请各位大侠千万指引一下,感谢.
yjf1026 (2014-2-12 16:15:31)
你在加一抗之前,有没有封闭?
另外,结果令人失望,是指什么样的结果?条带呈什么趋势?
cj_mondy (2014-2-12 16:15:56)
封闭了,用百分之5的牛奶封闭2小时,结果是没有条带.
对了我想问一下,转膜时膜是怎么放的?我们是带黑疙瘩的那一面上面放两层滤纸然后放胶,然后再放PVDF膜,最后再放两层滤纸.
那个带红疙瘩的夹子上是这样的:红疙瘩的那一面上面放2滤纸--胶--PVDF膜--2滤纸.
楼上的老师,不知道我们这样放的顺序对吗?很急,敬请老师多多指教.谢谢.
xingyi08 (2014-2-12 16:16:42)
关键是看正负极,一般红色是对正极,黑色对负极。正极--2滤纸--膜--胶--2滤纸--负极。
abc816 (2014-2-12 16:17:00)
你用的是湿转还是半干转?
要不你点样时加预染Marker,下次转膜后看看Marker有没有转到膜上。
BOSS2011 (2014-2-12 16:17:17)
1. 一抗是辣根酶标记的,这样不用二抗的方法 敏感性低一些。为什么不用常规的一抗孵育后,结合HRP标记的二抗的方法?
2. 5%奶粉2h封闭,改成3%的奶粉封闭0.5h。我们实验室基本都是用3%的奶粉封闭0.5h。如果背景很深的情况下,采用5%。
3. 加大上样量。第一次做的时候做个蛋白梯度。找一个合适的蛋白上样量。
4.转膜的时候,记住是从负极向正极转。加一个彩虹marker,检测转膜效率。
5.多练习。
祝你 成功
cj_mondy (2014-2-12 16:17:38)
最后,你能不能讲一下你们实验室组织提蛋白的方法?十分感谢.
glass (2014-2-12 16:18:19)
转膜marker很清晰,而且BSA能够很好的转过去,说明转膜应该没有问题。
那问题就应该是出在你的样品上。我也觉的可能是目的蛋白含量太低了。
RIPA是最常用的组织裂解液,我们实验室都是自己配制,成分差不多。裂解液体中多加几种蛋白酶抑止剂,或者直接用cooktail。
建议你重新匀浆,匀浆的时候可以按照1:4(组织重量/组织裂解液)比例匀浆。
我也是新手 ^_^
祝你 成功
BOSS2011 (2014-2-12 16:18:44)
明白WB的原理,问题就好解决了!
avi317 (2014-2-12 16:19:07)
首先要看你蛋白提出来了没,我提组织蛋白的步骤给你的差不多,但跑完胶后用考马斯亮蓝染色后只有两条大的蛋白片段,其它的空白一片,建议跑完电泳后先鉴定一下你的目的蛋白提出来没有。
ritou1985 (2014-2-12 16:19:28)
如果你的蛋白提出来了,是不是你的封闭液浓度太大或者封闭时间过长了呢?建议1%BSA封闭1h试一下。
ending (2014-2-12 16:19:50)
我也建议转完膜后用立春红染一下,看具体是转膜还是孵育有问题。
有一些抗体要求必须用BSA封闭,你查一下抗体说明书
flower-201 (2014-2-12 16:20:06)
为什么不先做内参呢?
内参比较好做,做出来内参说明你的WB体系没有问题,后面就摸索一抗二抗浓度,还有就是你的目的蛋白的表达量。
建议先做内参吧。
am10 (2014-2-12 16:20:57)
各位高手,wb做不出来目的条带,考虑是组织中目的蛋白浓度低了,怎么提高蛋白浓度?超滤浓缩吗?
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