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字体: 小 中 大 | 打印 发表于: 2014-2-12 19:22 作者: tieshazhang 来源: 分析测试百科网
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原帖由 ero11 于 2014-2-12 19:23 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '') 蛋白的上样缓冲液有问题,再重新配置吧,很简单的。TAKALA的书上就有,我们试验室一直用的。
最新回复
bamboo16 (2014-2-12 19:23:03)
别人用这个loading buffer也出现这种现象了吗?可能是loading buffer中没有加甘油啊!loading buffer完全可以自己配啊,分子克隆、药典上和一些参考书上都有配方。
ero11 (2014-2-12 19:23:36)
nvdabing (2014-2-12 19:25:50)
QUOTE:
估计是甘油浓度不够btw 你觉不觉的takara配5*loading buffer似乎溴酚蓝加的太多了。。。
跑电泳是看着前面的那一大团 特别的不舒服
vcve (2014-2-12 19:26:18)
除了上样缓冲液的问题
很可能在做胶的时候,胶孔的一些碎胶没有清理干净,
仔细看一下,如果有清理一下。
还有,蛋白处理后离心一下,不要吸下面的沉淀,如果有的话
tieshazhang (2014-2-12 19:28:26)
是这样的,我表达的这种蛋白(大概70KD大小)有一种特性,在40度时会聚集沉淀,低于40度则是可溶状态,如果我用100度去煮样,那会不会我需要检测的蛋白再一离心就沉下去了,而我电泳加样时是吸取的是上清,那就检测不到了。怎么办 呢?
yonger (2014-2-12 19:29:31)
zwsyrt (2014-2-12 19:29:53)
在loading buffer里加点蔗糖
ha111 (2014-2-12 19:30:16)
就算你蛋白沉淀了,你的loading buffer也不至于会往上漂啊……难不成加了啥有机溶剂不成?太诡异了。反正简单得很的东西,干脆扔了重配,对吧。
yysr238 (2014-2-12 19:30:46)
PCR (2014-2-12 19:31:04)
我们做样品的时候,除了用5倍的buffer之外,还用过40%的蔗糖+一点点溴酚蓝,直接跟蛋白液样品混合上样,考马斯亮兰染色,没有什么问题。你也可以尝试一下。
【求助】蛋白电泳样沉不下去