【求助】western 转膜-预染marker转移不全

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【求助】western 转膜-预染marker转移不全
请教:做western 时用的Formatas的预染marker,Millipore PVDF 膜,转膜后可见75KD以上的大分子量的marker,但是看不到小分子量的marker,转膜条件:湿转,恒流自80-300mA,1-4小时都试过了.在胶上还可见少量大分子量的marker时,不论是凝胶还是膜上均不见75KD以下的小分子量的marker。延长转膜时间大分子量的marker均转至膜上,仍不见小分子量的marker。
转移缓冲液配方:Tris 5.8g,甘氨酸2.9g,SDS0.37g,甲醇200ml,加水至1L。
先谢谢大家!
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最新回复

  • wmp1234 (2014-2-15 15:35:59)


    转印缓冲液中的SDS去掉试试
    SDS可能影响小分子蛋白转膜
  • u234 (2014-2-15 15:36:15)

    多谢!明天我再试一下。今天用NC膜和PVDF膜同时做,条件相同,NC膜maker全部转移至膜上,PVDF膜仍然部分转移,且与NC膜比较,marker 颜色较浅。不知是何原因。
  • 莲花白 (2014-2-15 15:38:55)


    你的pvdf膜孔径是0.45的还是0.2的?
  • 04906 (2014-2-15 15:40:16)


    0.45.
  • ritou1985 (2014-2-15 15:41:21)

    不知道你是怎么理解转膜的?
    在SDS-PADE凝胶中,蛋白运动的速度由分子量和电场强度决定。分子量越大运动越慢,反之越快。电场强度越大,速度越快,反之越慢。
    你也发现凝胶和膜上都没有小分子量预染marker,那就说明小分子量的蛋白已经从凝胶中出来,但又没在膜上——肯定是转过了,都跑到转移缓冲液里面去了!那么就应该减少转移时间,怎么会想起要去延长呢?岂不是转过的更多吗?
    你做的目的蛋白是多大分子量的啊?如果在20KD以下,强烈建议用0.22(0.2um?)um孔径的膜。如果是30kD以上,可以用0.45um孔径的。可同时用两张膜重叠在一起,即便有蛋白穿过第一张膜,也会被第二张拦住的。
  • u234 (2014-2-15 15:41:51)

    QUOTE:

    原帖由 ritou1985 于 2014-2-15 15:41 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '')
    不知道你是怎么理解转膜的?
    在SDS-PADE凝胶中,蛋白运动的速度由分子量和电场强度决定。分子量越大运动越慢,反之越快。电场强度越大,速度越快,反之越慢。
    你也发现凝胶和膜上都没有小分子量预染marker,那就说明小分子量的蛋 ...
    谢谢!我同意您的看法,因为我的目的蛋白有两个25KD和110KD,内参42KD,当时延长时间是为了看110KD的转膜时间;但无论如何Marker也应该有的吧,而且做了对照,NC膜效果很好。若“同时用两张膜重叠在一起,即便有蛋白穿过第一张膜,也会被第二张拦住的”,若两张膜上都有,以下的步骤如何进行?两张膜都曝光?这样可以么?
  • mamamiya (2014-2-15 15:42:08)

    我们原先一块儿做过实验:
    1
    所谓的marker并不是什么特别的东西,只是已知分子量的几种蛋白的混合物,有些在上面已经用染料做了标记,有的没有。也就是说它具有蛋白共同具有的性质,自然也可以转过了;
    2
    你的两个目的蛋白分子量相差过大,建议电泳后将凝胶在110KD和42KD之间小心切成两块,两块胶分别同时转印,小分子量的转印时间短些,大分子量的时间长些。这种方法简便易行,也是允许使用的。
    3
    可以把两张膜都孵育一下。也可以根据两张膜上的marker颜色深浅来决定选择哪一张:在你的目的蛋白附近的marker颜色更深的,也就是更可能出现阳性结果的膜。
    祝你实验顺利!~~
  • u234 (2014-2-15 17:18:54)

    今天用PVDF膜0.45试了下,转移液中去掉SDS,110mA 1h,结果膜上可见Marker的所有条带,同时滤纸上也有模糊的条带,估计是转的时间长了或是电流大了,遂决定明天用NC膜和PVDF膜减小电流或缩短时间再试一下不知是否可行。
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