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【求助】纯化细节问题
【求助】纯化细节问题
请问高手:
1上柱后收集的蛋白在跑电泳前需不需要摇匀一下?万一蛋白分布不均匀,会不会影响电泳结果。
2文献上说要在对数生长的中后期诱导,具体是OD600值多少啊?
3如果超声破碎的菌液大概在3-4ml,那么镍柱应该上多高?柱高和上样量是什么关系?
非常感谢高手指点!
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【求助】纯化细节问题
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字体: 小 中 大 | 打印 发表于: 2014-2-20 22:33 作者: @花开花落@ 来源: 分析测试百科网
最新回复
pou (2014-2-20 22:33:26)
njkph (2014-2-20 22:36:32)
1、难道你加入蛋白样品和上样缓冲液后不混匀?上柱收集的蛋白应该主要分布在某个体积之中吧,不会有什么影响。
2、一般的菌对数期为0.6,不同的菌需要的OD不同,你应该根据自己的菌种,选择合适的OD。
3、你超声之后不是把样品全都过柱?样品超声后需要离心收集上清吧,全都过柱子不行吗?柱子蛋白载量不到最大,就能挂蛋白。我觉得柱高和上样量 没有关系。你可以先测你的蛋白浓度,根据这个选择上样的多少。
卓见
ero11 (2014-2-20 22:37:35)
@花开花落@ (2014-2-20 22:38:02)
@花开花落@ (2014-2-20 22:40:51)
我还有个问题,我的蛋白在80KD 左右,做小量鉴定时诱导和空白在80KD处没有明显区别,都有条带,难道这种蛋白基础表达就高?应该怎么解决呢?
多谢
birdfish (2014-2-20 22:42:13)
你可以换一个严谨型的表达宿主菌看看啊,象BL21(DE3)PLySs就可以的,这个带有T7聚合溶菌酶,可以严格控制表达,就是说在没有加诱导剂之前一般是不会有目的蛋白表达的。
guagua (2014-2-20 22:42:56)
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一般不需要混匀,因为溶液滴落时会有一定的混合作用,比如在做荧光蛋白时你可以看到收集管中颜色上下都是均匀的,除非你可以看到明显的沉淀。
@花开花落@ (2014-2-20 22:44:03)
呵呵,多谢指点,我还想问一下,如果诱导和空白的表达情况差不多,;有没有可能是因为质粒丢失啊?有没有必要去用原来的质粒重新转化一下啊?
还有就是有哪些可行的方法可以降低本底表达?
不胜感激
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