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【求助】2D图片出现的全是竖条纹
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发表于: 2014-2-27 10:19 作者: tangxin_80 来源: 分析测试百科网
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【求助】2D图片出现的全是竖条纹
2D图片出现的全是竖条纹,是怎么回事?急!每次都是
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【求助】2D图片出现的全是竖条纹
我也来说两句
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最新回复
zsxan1990
(2014-2-27 10:19:33)
主要两个可能原因:1. 聚焦过度; 2. 第一向胶平衡不够充分.
tangxin_80
(2014-2-27 10:23:48)
.
聚焦过度; 2. 第一向胶平衡不够充分.
非常感谢。
我7CM聚焦9800VHT,电压总上不去,1600V最高,每次平衡15分钟,我每次的图都一样,五次了,都不敢见老板了
zsxan1990
(2014-2-27 10:24:08)
您可以试一试平衡20~25min,但不要超过25min,否则可能引发蛋白的损失.
关于聚焦电压上不去, 不知道您的样品是怎么处理的, 不推荐直接裂解液上样,经常会出现离子过高(并不是裂解液盐分高,而是样品带进去的离子),电压上不去.
我推荐您将裂解后加1倍体积TCA-丙酮(1:9)低温沉淀30min, 12000g低温30min,再用水化液溶解, 上样即可.
tangxin_80
(2014-2-27 10:24:26)
样品处理过程:
肝组织提总蛋白后溶在裂解液,高速离心去核酸, PULL DOWN,溶在裂解液,水化上样,谢谢你的帮助
glass
(2014-2-27 10:24:42)
竖条纹是由于SDS-PAGE没跑好引起的.
tangxin_80
(2014-2-27 10:25:00)
竖条纹是由于SDS-PAGE没跑好引起的.
谢谢。我也觉得有可能,因为我的MRKER跑得不好,但我单独跑二向,又很好。
glass
(2014-2-27 10:25:32)
还有一个原因就是你IPG胶条放在二向胶上的时候有很多小气泡.
不要用0.75%的低熔点琼脂糖,这个凝固太快,容易产生竖条纹
yes4
(2014-2-27 10:26:04)
个人认为纵条纹和聚焦关系不大,可能是你的样品有杂质,比如说核酸的污染。还有一个可能就是在第一向向第二西转移的时候出现了气泡。
yes4
(2014-2-27 10:26:31)
可能的原因及解决方法:
1. 蛋白质从一向转移到二向时发生沉淀, 提高平衡的SDS浓度, 适当延长平衡 的时间;
2. 蛋白上样量过大;
3. 注意水质, 使用Millipore水;
4. 胶条平衡后仍带有额外的DTT, 使用IAA平衡胶条,去除额外的DTT.
LZ最好能给个大概的实验步骤,比如一向的聚焦vhrs数,平衡的步骤, 以便大家提出有针对性的建议.
祝实验顺利!
tangxin_80
(2014-2-27 10:31:14)
不要用0.75%的低熔点琼脂糖,这个凝固太快,容易产生竖条纹
那用什么琼脂糖?
tangxin_80
(2014-2-27 10:31:31)
蛋白质从一向转移到二向时发生沉淀, 提高平衡的SDS浓度, 适当延长平衡 的时间
我平衡DTT和IAA各15分钟,4%SDS,
30V10H
100V1H
500V 1H
1000V 1H
5000V 2H
5000V 1H
500V 10H
电压上不去,9800VHT
tangxin_80
(2014-2-27 10:32:53)
将SDSA加到9%,终于有点了,难道我的SDS有问题?
jujuba
(2014-2-27 10:33:18)
主要两个可能原因:1. 聚焦过度; 2. 第一向胶平衡不够充分.
======================================
我目前也是在做2DE,
想请问一下,为什么这两个原因会造成竖条纹呢?
tangxin_80
(2014-2-27 10:33:36)
我解决了竖条纹,SDS平衡加大SDS浓度,谢谢大家
ending
(2014-2-27 10:37:59)
不要贸然加大平衡液中SDS的含量,否则会特异性丢失某些蛋白,但同时也会特异性富集某些蛋白.
ritou1985
(2014-2-27 16:25:43)
为什么?
高熔点才会凝固太快吧
我们一般用的是1%的GE的低熔点琼脂糖
================================
还有一个原因就是你IPG胶条放在二向胶上的时候有很多小气泡.
不要用0.75%的低熔点琼脂糖,这个凝固太快,容易产生竖条纹
ritou1985
(2014-2-27 16:33:32)
GE手册上推荐2%,我们也是用的这个
特异性丢失?这个怎么讲?
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不要贸然加大平衡液中SDS的含量,否则会特异性丢失某些蛋白,但同时也会特异性富集某些蛋白.
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最新回复
zsxan1990 (2014-2-27 10:19:33)
主要两个可能原因:1. 聚焦过度; 2. 第一向胶平衡不够充分.
tangxin_80 (2014-2-27 10:23:48)
.
聚焦过度; 2. 第一向胶平衡不够充分.
非常感谢。
我7CM聚焦9800VHT,电压总上不去,1600V最高,每次平衡15分钟,我每次的图都一样,五次了,都不敢见老板了
zsxan1990 (2014-2-27 10:24:08)
您可以试一试平衡20~25min,但不要超过25min,否则可能引发蛋白的损失.
关于聚焦电压上不去, 不知道您的样品是怎么处理的, 不推荐直接裂解液上样,经常会出现离子过高(并不是裂解液盐分高,而是样品带进去的离子),电压上不去.
我推荐您将裂解后加1倍体积TCA-丙酮(1:9)低温沉淀30min, 12000g低温30min,再用水化液溶解, 上样即可.
tangxin_80 (2014-2-27 10:24:26)
样品处理过程:
肝组织提总蛋白后溶在裂解液,高速离心去核酸, PULL DOWN,溶在裂解液,水化上样,谢谢你的帮助
glass (2014-2-27 10:24:42)
竖条纹是由于SDS-PAGE没跑好引起的.
tangxin_80 (2014-2-27 10:25:00)
竖条纹是由于SDS-PAGE没跑好引起的.
谢谢。我也觉得有可能,因为我的MRKER跑得不好,但我单独跑二向,又很好。
glass (2014-2-27 10:25:32)
不要用0.75%的低熔点琼脂糖,这个凝固太快,容易产生竖条纹
yes4 (2014-2-27 10:26:04)
yes4 (2014-2-27 10:26:31)
1. 蛋白质从一向转移到二向时发生沉淀, 提高平衡的SDS浓度, 适当延长平衡 的时间;
2. 蛋白上样量过大;
3. 注意水质, 使用Millipore水;
4. 胶条平衡后仍带有额外的DTT, 使用IAA平衡胶条,去除额外的DTT.
LZ最好能给个大概的实验步骤,比如一向的聚焦vhrs数,平衡的步骤, 以便大家提出有针对性的建议.
祝实验顺利!
tangxin_80 (2014-2-27 10:31:14)
不要用0.75%的低熔点琼脂糖,这个凝固太快,容易产生竖条纹
那用什么琼脂糖?
tangxin_80 (2014-2-27 10:31:31)
蛋白质从一向转移到二向时发生沉淀, 提高平衡的SDS浓度, 适当延长平衡 的时间
我平衡DTT和IAA各15分钟,4%SDS,
30V10H
100V1H
500V 1H
1000V 1H
5000V 2H
5000V 1H
500V 10H
电压上不去,9800VHT
tangxin_80 (2014-2-27 10:32:53)
将SDSA加到9%,终于有点了,难道我的SDS有问题?
jujuba (2014-2-27 10:33:18)
======================================
我目前也是在做2DE,
想请问一下,为什么这两个原因会造成竖条纹呢?
tangxin_80 (2014-2-27 10:33:36)
我解决了竖条纹,SDS平衡加大SDS浓度,谢谢大家
ending (2014-2-27 10:37:59)
ritou1985 (2014-2-27 16:25:43)
高熔点才会凝固太快吧
我们一般用的是1%的GE的低熔点琼脂糖
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还有一个原因就是你IPG胶条放在二向胶上的时候有很多小气泡.
不要用0.75%的低熔点琼脂糖,这个凝固太快,容易产生竖条纹
ritou1985 (2014-2-27 16:33:32)
GE手册上推荐2%,我们也是用的这个
特异性丢失?这个怎么讲?
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不要贸然加大平衡液中SDS的含量,否则会特异性丢失某些蛋白,但同时也会特异性富集某些蛋白.
【求助】2D图片出现的全是竖条纹