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【求助】WB结果背景重,非特异性条带多!
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发表于: 2014-3-01 17:22 作者: dotaaa 来源: 分析测试百科网
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【求助】WB结果背景重,非特异性条带多!
WB结果背景很重,且有很多的非特异性条带,BSA封闭1个半小时,多克隆一抗过夜,二抗1小时,ECL。不知什么原因?
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【求助】WB结果背景重,非特异性条带多!
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7437654
(2014-3-01 17:23:28)
可以换用NC膜,减少蛋白吸附,降低背景;
封闭时间可以延长,过夜;一抗时间缩短,室温2个小时即可;
降低上样量和加大一抗稀释度;
延长冲洗时间和次数。
tuuu2
(2014-3-01 17:23:45)
如果你的BSA不是质量很好的话,比如进口分装的(Sigma)的,质量还行,其他的我们都试过,效果都不如牛奶,所以背景很重的话,如果没有好的BSA就换为牛奶封闭试一下,我想效果好一点。
birdfish
(2014-3-01 17:24:04)
封闭过夜,1抗2h,2抗1h,显色
封闭用脱脂乳
gogo
(2014-3-01 17:25:41)
杂带多的话建议降低一抗浓度,背景很高可以降低二抗的浓度,另外,若ECL显影时荧光很强的话,曝光时间要缩短,几秒钟即可,然后把片子放进显影液中,密切观察条带,感觉合适的时候就立即拿出来。
个人意见,仅供参考
eric930
(2014-3-01 17:26:14)
同意
封闭用脱脂牛奶
洗膜的时候时间长点
jingling845
(2014-3-01 17:26:32)
此外, 个人经验认为, 上样sample的处理方法也会影响抗体的特异性结合. 比如: 蛋白浓缩步骤等. acetone沉淀浓缩的蛋白样品就可以使抗体与非抗原产生非特异性条带.
DNA
(2014-3-01 17:27:24)
我也是遇到同样的问题,非特异性条带多,背景高,最主要的是目的条带很淡。每次曝光的时间都很长,15到30分钟。这该怎么办啊?希望各位大侠指点,谢谢。
可能是我要的目的蛋白本身的表达量太少了,这种情况应该怎么处理?谢谢!
49888
(2014-3-01 17:27:41)
最近发现很多大侠都做WB都存在高背景,我自从六月开始做就没有做出好的条带,总是高背景,条带不清晰,是否和天气有关呢?是不是天气太热的缘故呢?
喵咪
(2014-3-01 17:42:22)
except bolck more time, another way is purify your polyclonal antibody due to poor specifity of your antibody. use protein A or G, or make antigen-sepharose first, then purify. later method usually better.
dotaaa
(2014-3-01 17:42:42)
经过很多的问题,现在我做的条带基本比较理想了,
背景很清晰,基本没有杂带,条带很明显,每次ECL很亮,5秒曝光就可。
总结经验:
1 蛋白样本的处理:我用的是组织样本,用RIPA稀释蛋白,保持每个Sample浓度在3.5-4.5μg/μl,变性PCR仪 96℃、7min,这样变性后不会产生蛋白沉淀;
2 每孔上样:从一开始的30μg到现在的20μg,明显20μg做出来的条带要清晰理想很多;
3 SDS-PAGE:无殊;
4 转膜:无殊,转膜后可以根据Marker的位置剪下你要的目的条带的膜,这样可以节省后续步骤的试剂;
5 BSA:1h;
6 一抗:1:1000,注意反复使用4-5次或1-2周加入新鲜的一抗1-2μl,加入后不要再用TBST稀释,否则新鲜的一抗就没有很大的效果了;
7 TBST洗:10min,3次;
8 二抗:1:20000,注意反复使用3-4次或1-2周加入新鲜的一抗1-2μl,加入后不要再用TBST稀释,否则新鲜的一抗就没有很大的效果了;
9 TBST洗:10min,3次;
10 ECL
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7437654 (2014-3-01 17:23:28)
封闭时间可以延长,过夜;一抗时间缩短,室温2个小时即可;
降低上样量和加大一抗稀释度;
延长冲洗时间和次数。
tuuu2 (2014-3-01 17:23:45)
birdfish (2014-3-01 17:24:04)
封闭过夜,1抗2h,2抗1h,显色
封闭用脱脂乳
gogo (2014-3-01 17:25:41)
杂带多的话建议降低一抗浓度,背景很高可以降低二抗的浓度,另外,若ECL显影时荧光很强的话,曝光时间要缩短,几秒钟即可,然后把片子放进显影液中,密切观察条带,感觉合适的时候就立即拿出来。
个人意见,仅供参考
eric930 (2014-3-01 17:26:14)
封闭用脱脂牛奶
洗膜的时候时间长点
jingling845 (2014-3-01 17:26:32)
此外, 个人经验认为, 上样sample的处理方法也会影响抗体的特异性结合. 比如: 蛋白浓缩步骤等. acetone沉淀浓缩的蛋白样品就可以使抗体与非抗原产生非特异性条带.
DNA (2014-3-01 17:27:24)
我也是遇到同样的问题,非特异性条带多,背景高,最主要的是目的条带很淡。每次曝光的时间都很长,15到30分钟。这该怎么办啊?希望各位大侠指点,谢谢。
可能是我要的目的蛋白本身的表达量太少了,这种情况应该怎么处理?谢谢!
49888 (2014-3-01 17:27:41)
最近发现很多大侠都做WB都存在高背景,我自从六月开始做就没有做出好的条带,总是高背景,条带不清晰,是否和天气有关呢?是不是天气太热的缘故呢?
喵咪 (2014-3-01 17:42:22)
except bolck more time, another way is purify your polyclonal antibody due to poor specifity of your antibody. use protein A or G, or make antigen-sepharose first, then purify. later method usually better.
dotaaa (2014-3-01 17:42:42)
经过很多的问题,现在我做的条带基本比较理想了,
背景很清晰,基本没有杂带,条带很明显,每次ECL很亮,5秒曝光就可。
总结经验:
1 蛋白样本的处理:我用的是组织样本,用RIPA稀释蛋白,保持每个Sample浓度在3.5-4.5μg/μl,变性PCR仪 96℃、7min,这样变性后不会产生蛋白沉淀;
2 每孔上样:从一开始的30μg到现在的20μg,明显20μg做出来的条带要清晰理想很多;
3 SDS-PAGE:无殊;
4 转膜:无殊,转膜后可以根据Marker的位置剪下你要的目的条带的膜,这样可以节省后续步骤的试剂;
5 BSA:1h;
6 一抗:1:1000,注意反复使用4-5次或1-2周加入新鲜的一抗1-2μl,加入后不要再用TBST稀释,否则新鲜的一抗就没有很大的效果了;
7 TBST洗:10min,3次;
8 二抗:1:20000,注意反复使用3-4次或1-2周加入新鲜的一抗1-2μl,加入后不要再用TBST稀释,否则新鲜的一抗就没有很大的效果了;
9 TBST洗:10min,3次;
10 ECL
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