【求助】帮我分析一下SDS-PAGE电泳失败的原因


大家好,我最近一直跑SDS-PAGE电泳,因为是新手所以一直也跑不好,可是试了很多方法也不知道自己应该怎么改正,希望大家能帮我一把,提高一下,非常感谢~~~~


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最新回复

  • fsdd817 (2014-3-13 16:54:20)


    都扩散了,时间太长了或产热太多。试试200v,30分钟
  • 喵咪 (2014-3-13 16:55:05)


    胶没凝好 尝试延长凝胶时间
  • vivian4123 (2014-3-13 16:56:07)


    1. 蛋白为什么没定量?上样量差别过大,容易跑的宽窄胖瘦不齐
    2. 看看你的第4-6条带,都跑成波浪了。(6是maker吧?)
    一般来说“U”型的波浪一般是由于胶凝结时间过短,梳孔两侧没有凝好的胶对样品有一定的“迟滞”作用。上样量过大也可能会出现“U”带;而像你这种“W”型的条带主要是拔梳子的时候带动了胶的底部,或者是由于胶的底部有未清除干净的胶而致;还有一种可能就是你的胶本来就没有配好,里面有杂质(比如说上次配胶后没有洗干净容器),一些杂质或者是气泡导致条带不平
    3. 另外就是跑的时候电压过高,容易(尤其是小分子蛋白)跑的歪歪扭扭的。不过你这个胶从上往下都是波浪,应该不是这个问题。
    4. 条带7是什么东东?貌似降解的很厉害似的。
  • shenkunjie (2014-3-13 16:57:48)


    非常感谢各位大侠,我主要是水平确实有限,好多问题都不懂,所以很不好意思。左数第五条是mark为什么我的标准的第一条带总是跑不出浓缩胶呢?
    谢谢大家的帮助与支持!
  • 小糖块 (2014-3-13 16:58:13)


    同志!!你的蛋白降解了
    第一,请在提蛋白的时候加蛋白酶抑制剂,提完了冻到负20(重要)
    第二,不要用太高的电压跑胶,会产生热的。建议80-85伏跑集成胶;120-140跑分离胶。跑过集成胶以后,可以放在4度电泳。(重要)
    第三,10%的APS新鲜配制以后,分装冻入负20(重要)
    第四,检测你的丙烯酰胺试剂有没有问题
    第五,电泳液,用一次就扔了,别舍不得。。。
    重新做吧,按上诉要求,等你好消息。
  • 小糖块 (2014-3-13 16:58:46)


    还有,TRRI缓冲液的PH值特别重要,PH6.8和PH8.8的一定要调准啊!!
  • fsdd817 (2014-3-13 16:59:20)


    你的胶的浓度是多少啊?试试提高胶的浓度,我的配方(分子克隆):
    12%分离胶5ml(ddH2O 1.6ml, 30% acrylamide 2ml, Tris-HCl pH8.8 1.3ml, 10%SDS 50ul, 10% APS 50ul, TEMED 2ul), 5% 浓缩胶( ddH2O 1.4ml, 30% acrylamide 330ul, Tris-HCl pH6.5 250ul, 10%SDS 20ul, 10% APS 20ul, TEMED 2ul ), 在配制胶时适当多加一点APS和TEMED,可加快胶的凝聚,一般分离胶/浓缩胶 30/30min即可
  • tuuu2 (2014-3-13 17:00:11)

    你可以试试梯度胶,我这有