buffer配方:
ß-mercaptoethanol 342 µl(多一点没有关系)
20% SDS 5 ml
Tris-Cl pH 6.7 3.125 ml
加ddH2O至 50 ml
方法:
将用过的膜浸入stripping buffer中,置50-65℃水浴箱(泡沫箱就可以,里面放个温度计,把起始温度设调到65℃,到结束后可以保持温度在50℃以上)中30-45min,间断振摇。之后用TTBS洗10min*3次,马上可以再封闭使用,或用PBS浸泡4℃报存。
bluelake (2014-3-15 15:49:48)
QUOTE:
原帖由 remenb 于 2014-3-15 15:49 发表
buffer配方:
ß-mercaptoethanol 342 µl(多一点没有关系)
20% SDS 5 ml
Tris-Cl pH 6.7 3.125 ml
加ddH2O至 50 ml
方法:
将用过的膜浸入stripping buffer中,置50-65℃水浴箱(泡沫箱就可以,里面放个温度计,把起始温度设调到 ...
可是我没有ß-mercaptoethanol ,所以很郁闷
xyw5 (2014-3-15 15:52:29)
Buffer, 1 liter
15 g glycine
1 g SDS
10 ml Tween 20
Adjust pH to 2.2
Bring volume up to 1 L with ultrapure water
试试这个,用这个buffer洗膜2次,室温,每次5-10分钟
然后用PBS或TBS洗干净,就可以重新封闭了
PS:这是abcam介绍的stripping method
最新回复
ending (2014-3-15 15:47:57)
曝光时间 短一些一秒 或者几秒终 也可以不盖暗盒的盖子 就放在上面几秒就放在显影液里 试一试
bluelake (2014-3-15 15:48:18)
我做了不同时间的,当时间短时背景减轻但目的带也就很微弱了。
remenb (2014-3-15 15:49:19)
buffer配方:
ß-mercaptoethanol 342 µl(多一点没有关系)
20% SDS 5 ml
Tris-Cl pH 6.7 3.125 ml
加ddH2O至 50 ml
方法:
将用过的膜浸入stripping buffer中,置50-65℃水浴箱(泡沫箱就可以,里面放个温度计,把起始温度设调到65℃,到结束后可以保持温度在50℃以上)中30-45min,间断振摇。之后用TTBS洗10min*3次,马上可以再封闭使用,或用PBS浸泡4℃报存。
bluelake (2014-3-15 15:49:48)
QUOTE:
可是我没有ß-mercaptoethanol ,所以很郁闷xyw5 (2014-3-15 15:52:29)
Buffer, 1 liter
15 g glycine
1 g SDS
10 ml Tween 20
Adjust pH to 2.2
Bring volume up to 1 L with ultrapure water
试试这个,用这个buffer洗膜2次,室温,每次5-10分钟
然后用PBS或TBS洗干净,就可以重新封闭了
PS:这是abcam介绍的stripping method
wmp1234 (2014-3-15 15:52:51)
WB的背景结果是可重复的,你stripping处理后再做WB没有效果,这个是我的总结的经验.也就是说,同一块膜第二次WB的背景肯定比第一次的深,而且第一次的背景还会在第二次的地方出现, 至于具体原因我不清楚.
nn255 (2014-3-15 15:53:16)
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同意此观点,重复做背景还是高,不要浪费时间了。
33号 (2014-3-15 15:53:35)
阿k (2014-3-15 15:54:58)
降低二抗的稀释比
如果杂带多 降低一抗的稀释比
【求助】结果背景很高,想在同一膜上重新做