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【求助】两个小分子量蛋白怎么分离?
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我有两对 等电点和分子量 差别都很明显的蛋白,想请教一下高手,该怎么把它们分开?Smile
1:a蛋白分子量:4.3K PI= 8.1
b蛋白分子量:18K PI=5.2(b是不要的)
2:c蛋白分子量:9.55K PI=9.437
b蛋白分子量:18K PI=5.2(b是不要的)
纯化之后想做抗体,我现在手上的蛋白量很少,感觉是不是走柱子太浪费样品了,想请教下蛋白纯化高手还有什么办法分离两个蛋白?
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最新回复
cwcwcww (2014-3-18 21:30:55)
QUOTE:
1、分子筛2、超滤
3N4G (2014-3-18 21:31:48)
建议
1 用10k左右的超滤膜试试分离a和b b和c很难用超滤分开
2 强烈建议用离子柱分离 很简单 用ph 6.5-7.2的环境上cm柱子 然后收集洗脱就可以 b会被流传
bongte (2014-3-18 21:32:06)
如果再用Ni柱分离的话,还是用咪唑梯度洗脱吗?谢谢
Darcy (2014-3-18 21:32:26)
蛋白质量不多的话用superdex30分离一天就完事了,不要超滤,损失太大,得不偿失。此外可以用阳离子柱纯化,pH在6.0左右,收集洗脱蛋白就是你的目的蛋白
youyou99 (2014-3-18 21:32:49)
如果你做抗体只是为了WB,那么我推荐直接跑SDS-PAGE,然后直接按分子量切胶,之后有两个选择,一是做电洗脱,二是直接液氮研磨切下的胶条,直接用磨碎的胶粒免疫小鼠/大鼠,就没问题了,省事,而且得率有保证。电洗脱就不说了吧,第二个选择可以直接搜索“切胶免疫”即可,高人很多啊。
白白的 (2014-3-18 21:33:07)
这招虽然有些笨 但比较“狠” 样品损失小,纯化效率高,做对照品或者结构鉴定时很有帮助。
bongte (2014-3-18 21:33:36)
最后我选择的办法是柱上酶切,大家帮忙看看我的过程行不行?
6M尿素溶解包涵体取上清(样品中目的蛋白条带清晰)--含6M尿素、20mM咪唑的binding buffer平衡Ni柱--上样--6M尿素、20mM咪唑的wash buffer洗脱--6M尿素、40mM咪唑的wash buffer洗脱--肠激酶缓冲液洗柱--加10ul肠激酶的缓冲液保留在柱上--25度16小时--肠激酶buffer洗脱电泳结果没有我要 的9KD的条带(12%SDS-PAGE应该没跑出去,14k条带离下面还有两厘米呢)
1. 难道是我的EK加少了?还是最后洗脱的时候,肠激酶buffer洗脱不下来?
2.我判断我的样品应该还在柱上,所以我决定咪唑梯度洗脱,不加尿素了,行吗?
3.加了尿素的咪唑洗脱缓冲液(用于Ni柱蛋白变性洗脱的)能在4度长期保存吗?不能的话多久会失效?
bongte (2014-3-18 21:34:52)
因为我们实验室不做动物,所以要去外面做多抗
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