您的位置: 分析测试百科网>> 论坛>> 经验共享>> 查看帖子
字体: 小 中 大 | 打印 发表于: 2014-3-29 11:03 作者: tie8 来源: 分析测试百科网
68550656.jpg
最新回复
tie8 (2014-3-29 11:04:22)
不知怎样才能获得浓度比较大且比较纯的目的蛋白,下一步用来免疫兔子做抗原用。
gogo (2014-3-29 11:04:56)
我看你的图,感觉有点象是降解的感觉,杂带都在你目的蛋白的下面,你可加点蛋白酶抑制剂!操作迅速!
超声破碎后所有的操作都在冰上操作!洗脱不需要梯度啊,你20mM咪唑洗涤后,直接用250mM洗脱就可以了啊!
qqq111 (2014-3-29 11:05:56)
如果实验室只有Ni柱,那就需要增大洗脱体积:
建议采用50~100倍Ni柱体积的最适咪唑浓度的洗脱液。
一般情况下,40~50mM的咪唑基本上可以洗去绝大部分的菌体蛋白,关键是洗脱液体积要够量,浪费一点也无所谓。
glass (2014-3-29 11:06:58)
yjf1026 (2014-3-29 11:07:21)
==============================================================================
这效果已经不错了,至少比我做的几个蛋白的效果都强。一步ni柱到这种程度要是我的话就很满足了。
yonger (2014-3-29 11:07:43)
我的蛋白连柱子都挂不上去啊
更惨
zhenxin (2014-3-29 11:08:02)
我的蛋白能挂上,但是很容易洗脱,低浓度的一洗就掉,怎么办啊?是不是可以降低PH值?现在用7.5的,要调成多大合适呢?
第一次纯化没经验,忘各位大侠多多指教啊.
969 (2014-3-29 11:10:52)
我的也有像这样的杂蛋白,做了两三次,增加了洗脱液体积,但杂蛋白还是没有去掉,不知道是不是没有加蛋白酶抑制剂的原因。
【求助】NI柱纯化,如何去除杂蛋白