【求助】Western blotting不出结果

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【求助】Western blotting不出结果

我提取的是脑组织中总蛋白,目的蛋白是胞浆蛋白,63KDa,做的步骤 如下:
1.电泳用12%分离胶,5%基层胶;
2.上样量100ug和200ug都做过;
3.半干转膜,16mA70min,用预染蛋白marker确定转膜效果,都转到膜上了;
4,封闭用5%脱脂奶粉30min;
5.一抗1:200,4度过夜,第二天室温摇床摇4h,抗体推荐稀释度:1:200-1000,多克隆抗体;美国Santa Cruz公司的抗体;
6.TBST洗5min*3次;
7.二抗1:2000,室温摇床摇3h, TBST洗5min*3次;
8.ECL显色;
结果:膜上什么条带都没有。我做内参出来的图形非常好,可以证明这个体系没有问题。
请各位分析一下,哪一步骤出问题了,十分感谢!我今天准备把一抗浓度再加大到1:50。
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最新回复

  • 莲花白 (2014-3-31 22:08:02)


    不知道你是否有你的目的蛋白的阳性对照,比如细胞表达的蛋白用其它抗体确定是可以检测到的,可以做为阳性对照,来验证Western是没有问题的。
    从你的描述来看,一抗和二抗的结合时间都比我们平常用的时间要长,而洗的时间又相对要短,因此一般会出现的问题多是比较不干净,而你的结果是什么都没有,可能的问题主要可能是一抗和二抗的问题,或者样品里的蛋白太少,检测不到。因此针对上述做阳性对照比较重要。
  • hyuu (2014-3-31 22:10:23)

    是啊,我为了让目的条带出来,就是有非特异性条带也没关系。但是还是出不来,关于设置阳性对照,还是挺有道理的,我考虑考虑。
    今天又做了内参,奇怪了,这次连内参都是什么条带都没有,上次做的内参还很好,整个体系就只是变了预染Marker,是以前的Marker用完了,我们买的新预染Marker,天根公司的,会不会是Marker的分子量不准所致?追究原因中……
  • xingyi08 (2014-3-31 22:10:46)


    用的是整块膜还是相应区域的膜呢?如是整块膜,则可排除‘Marker的分子量不准所致’的可能性,建议设置阳性对照。
    Good luck!
  • tie8 (2014-3-31 22:12:19)

    不要把膜剪得太小嘛!
  • jiushikeshui371 (2014-3-31 22:13:10)


    检查一下一抗和二抗是否相匹配!
  • wu11998866 (2014-3-31 22:13:58)

    作western还是建议采用阳性对照
    证明实验可行
    有时候电泳样品的含量过低
    不容易观察到结果
    这时候就需要阳性对照
  • hyuu (2014-3-31 22:16:09)


    谢谢大家热情分析,回复ever_cool:我的目的蛋白分子量是63KDa,用的是相应区域的是胶,根据预染Marker条带,我切的胶包括94和60条带,其中60以下多切了0.5CM,如果按照Marker,应该也够了。
    回复alcohol_ayd:一抗是山羊多克隆抗体,所以二抗用的是兔抗山羊IgG/辣根酶标记抗体,应该也没问题。
    基于以上朋友们的意见:我们打算1.把胶再切大一点,2.设置阳性对照。
  • tie8 (2014-3-31 22:16:29)


    我也碰到这样的问题,如果内参出来,目的不出来的话,可以考虑,把用到牛奶的地方全部改用BSA,包括封闭和二抗稀释液,然后根据背景再调整是使用BSA还是牛奶。感觉牛奶还不能算是万能的封闭剂,做有些蛋白封闭得很好,有些蛋白不行,还有些好像把目的蛋白也封闭掉了~
    还有个前提,就是目的蛋白没有被你切掉~
    个人意见~
  • hyuu (2014-3-31 22:17:58)


    终于找到原因了,有两个原因:1.预染蛋白Marker分子量不准,45KDa条带跑在了40与35条带之间,并且靠近35条带;切胶时偏移,2,ECL发光试剂盒出了问题,显不出色,用另一套才管用。
  • yychen (2014-3-31 22:20:36)


    有点建议 或是问题,
    和你的不同 ,就是我封闭的时间可以4度过夜,
    加入一抗和二抗的时间在1-2小时
    还有就是 用TBST洗5min*3次洗过之后,再用TBS洗一次。
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