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【求助】western为什么刚开始荧光很强...
请教大家,做western都是用的什么红灯,我的红灯总是被烧坏了(我在红灯外包了一层红布,灯泡总是很热)呢?有什么好点的红灯推荐下吗?大家都是用的什么红灯阿?还有就是昨天昨western,加完ECL后能看到清楚的绿色荧光,一分钟内就看不见了,是什么原因啊?是ECL不行了吗?【求助】western为什么刚开始荧光很强...
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最新回复
yes4 (2014-4-12 15:06:18)
可能体系中有太多的HRP很快消耗掉底物,而致信号很快消失,可以稀释二抗,再增加ECL用量试试
am10 (2014-4-12 15:07:06)
至于荧光很快看不到,很可能是因为你二抗的浓度过高,需要成倍稀释你的二抗(最好能把你的实验条件写出来,便于大家给你想办法),另外,质量差的保鲜膜、过于灵敏的显色底物都可能造成淬灭
祝实验顺利
xevin (2014-4-12 15:07:26)
nut6694 (2014-4-12 15:09:33)
有杂带,你的一抗和二抗的浓度都有些偏高,我们一般一抗1:1000左右即可,二抗1:10000左右。加完ECL后能看到清楚的绿色荧光,说明你的膜上HRP量很大。
89tongzijun (2014-4-12 15:10:44)
所以我们就要对抗体浓度做出相应的调整,你做好能把二抗做个梯度,然后,孵育时间缩短到一小时,祝实验顺利
yjf1026 (2014-4-12 15:10:59)
xevin (2014-4-12 15:11:23)
birdfish (2014-4-12 15:12:22)
请问你,1:7000的二抗应该怎么配啊?是1ul加入7ml还是0.1ul加入700ul呢?
如果是前者的话,那我一次如果用不了这么多,剩下的怎么保存呢?能够保存多久呢?如果是后者,0.1ul话能够吸的准么?
非常感谢
xue258 (2014-4-12 15:12:57)
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一抗四度摇床过夜效果要更好,但是不是说杂带就会少些,是说抗体与目的蛋白的结合更好,而杂带,则与封闭,洗膜,以及抗体特异性关系大一点
另外,回楼上战友:
一般都是1ul加入7ml.如过是700ul总量的话,二抗很难与一抗充分接触,为了省一点并不昂贵的二抗,前功尽弃的话,是不是有点得不偿失啊。
此外,可以用保鲜膜封上在四度保存,大概可以重复用到牛奶臭为止(3天),当然,如果加入防腐剂就可以保存更长时间了(不用叠氮钠就成),但是,不是很赞成二抗长期使用,没必要,呵呵
祝实验顺利
jujuba (2014-4-12 15:13:17)
用多少配多少吧,我觉得如果你用5ml那就加 5000/7000 ul 二抗好啦
131415 (2014-4-12 15:13:37)
请问要检测磷酸化的抗体如磷酸化P53,AKT,哪几个过程需要特别注意,谢谢。
131415 (2014-4-12 15:14:02)
请问要检测磷酸化的抗体如磷酸化P53,AKT,哪几个过程需要特别注意,谢谢。
还有我买的是Cell signal公司的一抗和二抗,它的说明书上推荐一抗1:1000,二抗1:2000,我按照这个方法做的结果有的蛋白结果较好,有的蛋白始终有杂带。还有就是磷酸化抗体总是做不好,请指教,谢谢。
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