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字体: 小 中 大 | 打印 发表于: 2014-4-21 11:23 作者: bluelake 来源: 分析测试百科网
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原帖由 H2O 于 2014-4-21 11:25 发表 bbcodeurl('http://bbs.antpedia.com/images/common/back.gif', '') 我想问一下用凝胶过滤法进行纯化蛋白时,缓冲液根据什么配制呀?我看资料怎么用的缓冲液都不一样呀,一般用什么较好?我的包涵体是用8mol/l的尿素溶解的. ...
最新回复
abc816 (2014-4-21 11:23:53)
你首先要考虑怎么得到可容蛋白吧,难道是想纯化包涵体吗
第一复性,第二更换载体试试,第三,低温试试。
tuuu2 (2014-4-21 11:24:19)
4个Ni预柱很难做到80mg蛋白,我觉得至少也需要10毫升左右的填料,纯化的方法只能过镍柱,没更好的方法.
eve_49 (2014-4-21 11:24:41)
80mg挺多的如果柱子小得话,纯化很费时费事的,你表达的蛋白主要在包涵体里,那不妨采用纯化包涵体的方法,比如细菌裂解液裂解后超声,在尿素中溶解后,复性、浓缩,可以选用柱层析的方法纯化,具体哪种柱层析根据你们的情况选择吧。
H2O (2014-4-21 11:25:30)
tianmei001 (2014-4-21 11:26:00)
我最近做原核表达,蛋白以包涵体的形式出现,想纯化出80mg左右的蛋白,什么方法纯化较好?实验室有4个Ni预柱,很小,不知道能不能纯化出80mg蛋白?大概需要多久?
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80mg对于实验室规模来说是比较多的了,一般好的Ni柱一毫升满载量在5~10mg,通常都很难达到这个载量,所以你至少需要10毫升介质多次纯化。如果你是需要有活性的蛋白,那就必须摸索包涵体复性了,复性能做到50%的回收率是非常好的了,换载体也是比较好的建议,但需要一次都做些不同类载体,来确定哪个载体可以可溶性表达
tianmei001 (2014-4-21 11:26:31)
QUOTE:
凝胶过滤法纯化通常都是在经过初步纯化以后的步骤,这时你的目的蛋白至少要占总蛋白的50%左右吧,缓冲液没有明显限制,只要能使目的蛋白稳定就可以了,但缓冲液通常含15%NaCl,降低层析介质的非特异性吸附的问题。如果你是在8M脲缓冲液进行分子筛,这时候你要考虑温度,以及柱压得问题,因为温度低,尿素会结晶,堵塞柱子,另一方面含尿素的溶液黏度会比较大,柱压比较高。如果是溶解在尿素里的包涵体进行纯化,我倒是建议可以采用离子交换,装柱容易,速度快,操作也简单,可能会比分子筛更好BOSS2011 (2014-4-21 11:26:51)
可以用柱层析Buffer(1L,PH 8.0):20 mM Tris--2.426 g;150 mM NaCl--8.766 g,高压灭菌,用时加PMSF.或者用PBS也可以,PH 7.4,用时也要加PMSF。
bluelake (2014-4-21 11:27:16)
谢谢各位的建议,
就象楼上 老师说的一样,我的蛋白复性率不高,透析时有很多蛋白沉淀,这样的话就太难得到我所要的量了.
zhenxin (2014-4-21 11:27:49)
【求助】纯化蛋白???