【求助】包涵体表达后的电泳检测

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【求助】包涵体表达后的电泳检测
最近在做包涵体的纯化,请教战友们一个问题:
对于可溶性蛋白,如果想知道诱导是否成功,我们一般取1ml菌离心后,用loading buffer煮样5分钟,然后离心,取上清电泳。
包涵体的操作protocol是不是一样?我简单的写一下,请战友们指正:
1 取1 ml菌液,离心,弃上清。
2 加入10 ul 5×SDS loading buffer,煮样5分钟。
3 加入40 ul 无菌水,混匀。不离心。
4 取30 ul上样,电泳。
我搜索过本版的帖子,都是关于纯化的,所以不确定包涵体能否溶解在SDS溶液里,所以在这里请教各位。(其实可以取上清和沉淀分别电泳吧,不过现在实验室只有pre-cast的胶,用来摸条件的话比较亏)
先谢谢了!
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最新回复

  • bamboo16 (2014-5-20 13:36:21)

    1 取1 ml菌液,离心,弃上清。
    2 加入适量PBS,超声波破碎,或者溶菌酶裂解细胞。
    3 5000转(3000G)离心15分钟,分别取上清和沉淀。
    4 上清与沉淀分别用5×SDS loading buffer处理,上样电泳。
    5 如果上清中没有你的目的条带,那么你的蛋白可能是主要以包涵体形式存在。
  • one (2014-5-20 13:36:42)


    不好意思,我不知道什么是pre-cast的胶,我们这都是走普通的SDS-PAGE胶。前些日子都在做包涵体,我们只取300 ul左右菌液,离心去上清,加20 ul2×SDS loading buffer、20水,煮样5分钟后取20 ul上样,电泳。
  • misswu61 (2014-5-20 13:37:01)

    不用离心,直接取菌体电泳对吧?
    Pre-cast胶就是买人家做好的胶,比较贵而已
    等做出结果来再更改标题,再次感谢!
  • flower-201 (2014-5-20 13:37:19)

    细菌表达的可溶性蛋白是分泌在细胞壁与细胞膜之间,而包涵体是分泌在细胞浆中的不溶于水的颗粒状物体,蛋白没有形成正确的折叠。蛋白不管是何种表达,蛋白都是在菌体中,收集菌体,煮沸可以看出蛋白是否表达。如果有表达。我们会用netjuzi的方法进一步鉴定蛋白的表达方式。
  • 耗子=== (2014-5-20 13:37:56)


    很想问问大家,1ml菌液液可以超声吗?那是不是要很小的探头啊?
  • huifeng0516 (2014-5-20 13:38:18)


    楼主,你的蛋白是包涵体表达,那你用的是什么载体啊?
  • ukonptp (2014-5-20 13:38:44)

    很想问问大家,1ml菌液液可以超声吗?那是不是要很小的探头啊?

    ===========================================

    是的,没有可以用溶菌酶,要方便的多,而且可重复性好。
  • misswu61 (2014-5-20 13:39:10)

    disaster...
    I send the primer sequence to the technician in the lab, followed by her sending to purchase office in the colledge. The officer made a mistake for deleting a nucleic acid which resulting in a frame shift...Then the frame does not contain a stop codon...
    That is, at least, one of the reasons for the failure
  • misswu61 (2014-5-20 13:39:28)

    楼主,你的蛋白是包涵体表达,那你用的是什么载体啊?

    ==============================

    pET22b. Any suggestion? Thanks
  • misswu61 (2014-5-20 13:39:46)

    I should be more careful to check the sequence when I get the pachage other than just to check the name and scale...
    Now, I can do nothing but to wait the new shipment. Really a lesson.
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