【求助】PCR扩出来的条带亮度很弱是什么原因?

从高GC%的细菌基因组中PCR扩增一个2500bp左右片段,电泳检测有目的条带、无杂带,但目的条带亮度弱,我增加了模板的用量但没有改善。
反应条件:
95度 5min
(95度 1min
60度 45sec
72度 3min)33个循环
72度 5min
请大家帮我出出主意。

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最新回复

  • F22 (2016-3-02 15:00:02)

    加大产量的方法一般有几种
    1,加大镁用量
    2,加大引物或者摸板用量,非必要不要用这种方法
    3,采用降落PCR
    对于楼主的问题,建议采用降落PCR,你的后23个循环,可以每循环降低退火温度0.2-0.3度,或者加大Mg的浓度
    此外不要为了加大产量,就轻易的增加摸板用量,有的时候加大摸板用量也有可能抑制PCR,反而降低摸板用量或许可以得到更多的产量。
  • ladyhuahua (2016-3-02 15:00:54)

    偶的拙见:
    1. 模板的用量在你这种情况下应该和目的条带浓度关系不大——记得realtimePCR的原理图么,循环数够多时,目的片段的终浓度在不同模板量条件下相差不大;
    2.首先考虑扩增效率问题,可用touch down PCR,除开头几个循环外,后面的退火温度降低一些,可提高扩增效率;
    3.如果无效,建议使用两步法,95度 1min,(60-65)度 3min,可加入touch down 步骤;
    4.不知道反应体系如何配置,应该是使用了GCbuffer吧?TaKaRa的GCbuffer(尤其是II)的确会降低一些扩增效率;
    5.视你最终需要,如果是诊断目的,可多加一些Taq酶,也能增加扩增效率,但错配率和非特异扩增可能会增加。如果是克隆目的,其实目的条带暗一些很多时候并不影响最终实验结果。
    有不当之处,请多批评。
  • bring (2016-3-02 15:03:22)

    谢谢楼上两位的建议。我做的目的是为了克隆(不是诊断)。我用的是天根公司的PCR Supermix,就是只需加入模板和引物就可以的,那上面说可以有效扩增高GC%模板。我是在50微升体系中加入3微升模板(模板浓度75ng/微升)。因为我还扩增另一个1000bp左右的基因亮度就很大,所以我想是不是2500bp的长片段比较难扩?
    另外,请问jh_dxy,什么是两步法?
  • ququer787 (2016-3-02 15:03:56)


    如果增加Mg离子浓度的话,需要增加多少的量?我用的是Takara RNA pcr kit(AMV)Ver.3.0试剂盒,50ul体系,MgCl2(25mM) 2ul.
  • vcve (2016-3-02 15:04:52)

    正常的mg是1.5,可以提升到2.0,2.5,3.0,不过不建议太多,因为太多会发生非特异扩增
  • 66小飞侠 (2016-3-02 15:06:02)


    谢谢楼上!
    我的RT条件是:
    30 度 60min
    42度 30min
    99 度 5min
    5度 5min 一个循环
    Total RNA 500ng/ul
    PCR条件是:
    94 度 2min 一个循环
    94 度 30sec
    56度 30sec
    72 度 1min 30循环
    72 度 5min
    跑电泳条带不亮,如果用降落PCR的话,可以增加扩增效率吗?怎样使用降落PCR?
  • ququer787 (2016-3-02 15:07:39)


    72 度 1min ?时间短了点。150sec试一试,你要P的2.5K长。
  • glass (2016-3-02 15:08:29)


    谢谢!
    我要P的不是2.5k长,而是408bp.我P的另外一个目的基因是685bp,条件同上,跑出的电泳挺好的.
  • yychen (2016-3-02 15:21:12)

    408bp的确不长,如果685bp扩的很好的话,要考虑你的引物是否有问题。
    另外,你的RNA质量如何?有没有DNA污染,两对引物都是在外显子区还是跨了内含子,这些都是RTPCR必须考虑的因素。
  • glass (2016-3-02 15:22:00)

    谢谢!
    这两个是同一批RNA,如果是RNA质量问题的话,那么685bp也应该扩的不好.我想现在改变一下RT-PCR的条件,看扩的怎么样.如果改变不行的话,那么就考虑是引物设计的不好.可是我现在不知道怎么改变反应条件,他们有说的要增加Mg离子浓度,或使用降落PCR,不知道有没有用过的,效果怎么样?
  • wiwi (2016-3-02 15:23:06)

    两步法就是退火延伸使用同一温度。
    touchdown就是头几个循环退火温度逐步降低,然后在较低退火温度条件下进行剩余循环。
    我扩增的GC含量高的样品都用的是TaKaRa 的酶和GC buffer。天根的不大好用。
    后来熟了,也为了省钱,就用DMSO代替GC buffer,效果不错,不过浓度要摸索一下,
    TaKaRa 和GC buffer联用的就是一种Taq LA酶,记得就是专门扩增长片段用的,可以试一下。
  • junjie05 (2016-3-02 15:23:53)

    请问可不可以用PCR扩增出来的产物为模板再做PCR来增加产物量?
  • redbutterfly (2016-3-02 15:24:29)


    可以这样做,但是一般都要做个梯度稀释的,10-1000倍不等,但是这样产生突变的几率就增加了许多!
  • bring (2016-3-02 15:25:11)

    两步法就是退火延伸使用同一温度。
    touchdown就是头几个循环退火温度逐步降低,然后在较低退火温度条件下进行剩余循环。
    我扩增的GC含量高的样品都用的是TaKaRa 的酶和GC buffer。天根的不大好用。
    后来熟了,也为了省钱,就用DMSO代替GC buffer,效果不错,不过浓度要摸索一下,
    TaKaRa 和GC buffer联用的就是一种Taq LA酶,记得就是专门扩增长片段用的,可以试一下。
    ......

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    LA酶扩增的产量如何?听说还有一种pfx酶,那是什么呢?
  • eor (2016-3-02 15:45:53)

    为什么用pcr产物再p,要做梯度稀释,为何产生突变的几率增加许多?
  • eor (2016-3-02 15:47:55)

    “TaKaRa 和GC buffer联用的就是一种Taq LA酶,记得就是专门扩增长片段用的,可以试一下。“
    能否具体解释一下做法。我就在作长片段的扩增。15kb。正为用什么酶发愁那。
    我用的是TaKaRa PrimerSTAR HS DNA Polymerase.您说的TaKaRa是什么酶?
  • DDD (2016-3-02 15:49:42)

    TaKaRa LA Taq with GC buffer
    code No. : DRR02AG
    在目录书上有,你打电话给公司,告诉他们编号就可以。