【求助】极性大的药物进行药物代谢的研究

最新回复

• hcy517 (2016-4-10 12:41:53)

  应该是乳化现象把
  我认为有
  1 再加一点萃取溶剂
  2 有热毛巾适当加热
  3 冷冻干燥
  4 缓慢转动漏斗
  5 加点电解质
  6 用吹风机加热

• yayayu (2016-4-10 12:42:14)

  我也试过液液萃取,效果也是不好.代谢物中有很多极性大的物质,有时代谢产物会和体内一些内原性物质结合生成极性大的物质排除体外,特别是尿样中很多象尿素这样的杂质极性很大,所以前处理时可以先将生物样品富集,然后尝试用制备液相分离纯化.不知本人见解是否合理,也请各位多多指教!!!

• 无怨无悔 (2016-4-10 12:42:35)

  若是极性样品，溶于甲醇、乙腈等；则可用氰基、氨基或二醇基的固相萃取SPE柱；

• xiaoxiaojinglin (2016-4-10 12:42:57)

  不是乳化现象。我是考虑到它极性比较大，易溶于甲醇等极性强的有机溶剂，所以用甲醇沉淀蛋白后上清液吹干复溶进样（这样的操作其实不应该叫做萃取吧，但我不知道应该把它称作什么，引起误会请见晾啊）。用SPE方法的话好像是可以的，但是实验室没有SPE装置……痛苦中……只能通过改善液液萃取的方法进行

• aaby (2016-4-10 12:43:19)

  你说的是不是常规的蛋白质沉淀法？
  上清夜有水，怎么能吹干呢？

• 886爱 (2016-4-10 12:43:47)

  关于这一点我也是很好奇，大家都告诉我上清液有水是吹不干的，但是事实是我确实吹干了，而且是用空气吹干的。我想解释只能是少量水是不影响的。

• jishiben (2016-4-10 12:44:20)

  第四章 生物样品的采集、储存及预处理
  第一节 生物样品的采集、储存
  
  体内药物分析的任务和分析对象具有如下特点:被测定的药物和代谢物的浓度极低；样品介质复杂，其中存在各种各样直接或间接影响测定结果的物质，大多需要分离和净化；仅有少量样品可供分析，尤其是在连续测定过程中，很难再度获得完全相同的样品；样品的稳定性需要特别注意等。
  一、生物样品的采集
  生物介质(biological matrix)包括全血、血浆、血清、尿、粪、唾液和各种组织。其中最常用的生物样品是血液和尿液。
  1.血样的采集
  供测定的血样应能代表整个血药浓度。若能从动脉或心脏取血最为理想，但只能用于动物，不能用于人。动物采血可根据不同种类及实验需要，采取适当的方法。如大、小鼠可由尾动脉、静脉、心脏、眼眶取血或断头取血等，家兔可由耳缘静脉、颈静脉等多处取血，犬可由前、后肢静脉等处取血。对于受试者通常采用静脉取血(成人从肘正中静脉取血，小儿从颈外静脉取血)。静脉取血一般将注射器针头插入静脉血管抽取。抽取的血液转移至试管或其它容器时应缓缓压出，以防血细胞破裂。
  全血在加肝素或柠檬酸、草酸盐等抗凝剂后，离心分取血浆，其体积约为全血的一半。血清则是由血液中纤维蛋白原等影响下，引起血块凝结而析出，离心取用，而血块凝结时往往易造成药物吸附的损失。
  全血直接作为样品时，也应加入抗凝剂混匀，防止凝血。对大多数药物来说，血浆浓度与红细胞中的浓度呈正比，所以测定全血不能比测定血浆提供更多的信息。而全血的净化较血浆与血清复杂，尤其是溶血后，血色素等可能会给HPLC测定带来影响。但是，一些药物可与红细胞结合，或药物在血浆和红细胞的分布比率因人而异，在这些情况下，宜采用全血。
  血样抽取量受到一定的限制。人体药代动力学研究需要在多个时间点(一般为12~20点)取样，每次由前臂静脉取血3~5m1。随着高灵敏度测定方法的建立，取样量可继续降低，从而更易为受试者接受。实验动物取血量应注意是否超过了动物的生理承受能力。
  制备血浆样品时，将采取的血样置含有抗凝剂的试管中，缓缓转动试管使其充分混合、离心，所得上清液即为血浆。常用的抗凝剂有肝素，它是体内正常的生理成分，因而不会改变血样的化学组成或引起药物的变化，一般不会干扰测定。通常lml血液采用20个单位的肝素即可抗凝。可将配制好的肝素溶液均匀地涂布在试管壁上，于60~70℃烘干备用。其它抗凝剂有柠檬酸、草酸盐、EDTA等，但它们可能引起被测组分发生变化或干扰某些药物的测定。制备血清样品时，将采取的血样在室温下至少放置30~60min，待血液凝固后，以3000~4000r/min离心10min，分取上层澄清的血清。
  血浆和血清在采血后应及时分离。短期保存时需置冰箱（4℃）中，长期保存时需置冰箱(-20℃以下)冷冻备用。
  2.尿样的采集
  尿药测定主要用于药物剂量回收、药物代谢及生物利用度研究，也可用于乙酰化代谢和氧化代谢快、慢型测定等。因为尿药浓度通常变化较大，所以应测定一定时间内排入尿中药物的总量，这就要同时测定在规定时间内的尿量(体积)及尿药浓度。
  尿液的主要成分是水、尿素及盐类。它是一种良好的细菌培养基，因而需立即冷藏或防腐处理，否则细菌会很快繁殖而引起尿素分解，产生氨气，这在夏天进行得很快，除产生异常气味外，还有可能导致样品分解。冷藏条件一般可置4℃冰箱内。若欲在室温下保存，应在收集尿样后，立即加入防腐剂。常用的防腐剂有甲苯、氯仿或改变尿液的酸碱性，以抑制细菌的繁殖。加入的防腐剂是否干扰测定或与被测组分发生化学反应，应由实验验证，以便选取合适的防腐措施。
  在所有体液样品中，尿样最容易获得，并且样品量大，取样次数可以增加，内含药物(母体药物及代谢物)浓度高。健康人的尿液中不含蛋白质，不需除蛋白，所以常用作药物体内代谢研究。
  3.唾液样的采集
  由于某些药物在唾液中的浓度与血浆浓度密切相关，即可利用唾液中的浓度反映血浆中的药物浓度。由于唾液样品采集时无伤害、无痛苦，取样不受时间、地点的限制，因而样品容易获得。一般成人每日分泌唾液1~1.5L。唾液的比重为1.003~1.008，粘度是水的1.9倍；唾液的pH在6.2~7.6之间变动，分泌量增加时趋向碱性而接近血液的pH。通常得到的唾液含有粘蛋白。
  唾液的采集应尽可能在剌激少的安静状态下进行，采集前应漱口，除去口腔中的食物残渣，唾液自然分泌流入收集管中。采集后离心，分取上清液作为药物浓度测定的样品。也可采用物理方法(嚼石蜡片等)或化学方法(广泛应用的是柠檬酸或维生素C等，有的将约10mg柠檬酸结晶放在舌尖上，或者将10%的柠檬酸溶液喷在舌上，弃去开始时的唾液后再取样)刺激，使在短时间内得到大量的唾液，但这样可能影响唾液中的药物浓度。
  唾液中的粘蛋白决定了唾液的粘度，它是在唾液分泌后受唾液中的酶催化而生成的。为阻止粘蛋白的生成，应将唾液在4℃以下保存。如果分析时没有影响，则可用碱处理唾液，使粘蛋白溶解而降低粘度。唾液在保存过程中，会放出CO2，而使pH升高，需要测定唾液pH时，应在取样时测定较好。冷冻保存的唾液解冻后应将样品混匀后使用，以免产生误差。需要指出的是只有知道唾液中药物浓度与血清中药物的总浓度有一定的比值时，唾液中药物浓度的监测才有意义。