[求助]肝星状细胞原代培养

查看完整版本请点击这里:
[求助]肝星状细胞原代培养



现正在做肝星状细胞的原代培养,方案如下
1。300gSD大鼠麻醉开腹门脉插管,用37度预热的250mlD-Hanks液+肝素20-30ml/min快速灌注清除肝内血液,1min,切下肝脏
2。1%胶原酶20毫升循环灌注,直至肝脏消化变软
3。肝脏剪碎用1%胶原酶孵育消化37度15分钟
4.100g十分钟,去沉淀
5.350g十分钟,取沉淀,DMEM悬浮,铺在25%percoll上(25%percoll预先30000g离心15分钟)800g离心30分钟,取培养液与percoll之间的细胞层
第一次分离细胞成功了,可最近几次都失败,特别是350g离心之后,沉淀中出现膜状物,没办法吹散,将其弃去后,就不剩什么细胞了,请问怎么回事?以上方法有什么可改进的地方吗?
查看完整版本请点击这里:
[求助]肝星状细胞原代培养

我也来说两句 查看全部回复

最新回复

  • 66+77 (2012-3-06 16:42:21)


    有可能是细胞黏附在一起了,建议在洗涤的过程中加入DNA酶,防止细胞黏集。另外,建议改进以下方法:
    1.第一步Hanks灌流的时间要延长至5~8 min,这样才能充分冲走血液;
    2.灌流和胶原酶消化步骤间,应加入链酶蛋白酶,消化肝实质细胞;
    3.胶原酶消化后,应用含DNA酶的DMEM洗涤2~3遍。
  • 8princess8 (2012-3-06 16:42:38)


    原代细胞的分离要求很严格,否则会得不到细胞,或者即使得到细胞的状态也很难保证。
    1.D Hanks液灌流的时间可适当的延长,灌流速度也可以适当的加快,促进血液的排出。但建议灌流3-5分钟就应该游离肝脏了,因为游离要十分的小心,需要5-8分钟的时间,这样就可以边灌流边游离了。
    2.酶灌流液的配方应包括0.1%的胶原酶和0。05%的链酶蛋白酶E,10mMhepes及双抗。液体量也可以多一些以增加灌流效果。
    3. 组织消化液也需增加链酶蛋白酶E。
    4.消化后用200目的纱网过滤,可替代100g,10分钟的离心时间。
    5.350g的离心时间也可以降低5-8分钟,及加percoll后离心时间20分钟也行了,若不放心,可适当的提高速度至1000-1500g(因分离液不同,时间不同)
    总之,中间的操作时间尽量的减少,以保证细胞的活力。还有就是各种液体的配方需要调整。
    仅供参考
  • 49888 (2012-3-06 16:43:55)


    弱弱地问:800g离心30min,是什么意思?刚刚学习细胞培养,见过“1000r/min离心10min”,可是理解不了“800g离心30min”。请帮忙解释一下,多谢了:)
  • tuuu2 (2012-3-06 16:45:14)


    800g是离心力,1000r/min是转速,二者可以相互换算
    不同的转头由于离心半径不同,在相同转速下离心力不同
  • pencil菲 (2012-3-06 16:46:38)

    由于肝星状细胞在肝内的数量比例很低,密度又和其他几种肝脏非实质细胞接近,因此较其他细胞的分离步骤而言,步骤比较多,操作时间较长,且细胞的纯度很难控制,国外采用的淘析离心纯化方法及其仪器目前在国内难以达到。
查看完整回复请点击这里:
[求助]肝星状细胞原代培养