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我在做蛋白电泳时,整个蛋白胶的条带都不是很清除,比较淡,是什么原因 呢。菌体裂解的不好、上样缓冲液有问题、染色和脱色出问题,这些原因中哪些最有可能?要是110KD的蛋白,根据分子克隆上的参考的话,得选择6%的分离胶,我选用的是10%的,因为我发现大部分条带都跑到下面去了,上面很大区域是空白,10%的胶能跑开吗?
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字体: 小 中 大 | 打印 发表于: 2014-6-14 15:37 作者: qhyu 来源: 分析测试百科网
最新回复
fsdd817 (2014-6-14 15:38:09)
蛋白量要保证,还有染色和脱色应该注意一下.10% 的应该可以.
huifeng0516 (2014-6-14 15:38:32)
会不会是蛋白样品的离子强度太大?如果是这方面的原因,可以透析或超滤除盐
ukonptp (2014-6-14 15:38:49)
如果以前很清晰的话,可能是染色液的问题。我跑70KD的蛋白也用10%,有一时间条带很不清晰,重配了染色液后条带重新清晰了,包括以前不清晰的样品。
qhyu (2014-6-14 15:39:10)
我的染色脱色液都是重新配过的,可是也不是很清晰,我现在打算重新来过,包括上样缓冲液都重新配置一次,看看会怎么样,要是还不行的话,我就真的没辙了~!
windy+++ (2014-6-14 15:39:30)
taoshengyijiu (2014-6-14 15:39:55)
是不是有可能SDS的浓度过高了呢?
意见仅供参考
mimili_901 (2014-6-14 15:40:19)
qhyu (2014-6-14 15:40:41)
谢谢大家的建议和意见,我在问一下,在脱色的时候,按照分子克隆第三版的方法操作的话,有什么利弊呢,如果染色液按照分子克隆上说的配制,那脱色液用甲醇:水:冰醋酸为5:4:1的配方怎么样?
qhyu (2014-6-14 15:41:11)
pengke1983 (2014-6-14 15:41:29)
看过一些介绍说甲醇和冰醋酸是固定用的,考染的时候亮蓝+甲醇+冰醋酸是染色与固定同时进行,至于甲醇在脱色时浓度的问题就难说了
不过关于脱色可以给你个建议,用0.2M的NaCl溶液在55℃下脱色,又方便又没有污染
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