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【求助】请教Western 的高手,关于460KD的蛋白
请教一下Western 的高手,我蛋白的分子量是460KD,用5%的积层胶和5%的分离胶跑了好几次,均没有出现我需要的条带.是不是我配的胶的浓度不对,可是胶的浓度太小,有很容易碎.请教一下我该怎么办【求助】请教Western 的高手,关于460KD的蛋白
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【求助】请教Western 的高手,关于460KD的蛋白
字体: 小 中 大 | 打印 发表于: 2014-7-05 17:09 作者: plaa 来源: 分析测试百科网
最新回复
ROSE李 (2014-7-05 17:09:54)
49888 (2014-7-05 17:10:27)
u234 (2014-7-05 17:10:53)
我估计是分离胶的浓度太低了,目的条带后来跑得太散,浓度不够,所以显示不出来。你可以这样:
1.先试一试8%的分离胶
2.跑大的密度梯度分离胶可能也会有收获。
wmp1234 (2014-7-05 17:11:10)
我估计是分离胶的浓度太低了,目的条带后来跑得太散,浓度不够,所以显示不出来。你可以这样:
1.先试一试8%的分离胶
2.跑大的密度梯度分离胶可能也会有收获。
pengke1983 (2014-7-05 17:11:28)
windy+++ (2014-7-05 17:12:00)
为什么用6%,7%或8%的分离胶,分子克隆上不是说,5%的分离胶范围是57KD-212KD,如果胶的浓度再大一些,是不是分离的分子量更小呢?如果用,460KD的蛋白能不能跑下来呢?那电泳需要什么条件、时间?电压?请教各位高手有没有跑过大于400KD的蛋白,尽情指点!实在不知怎么办
分子式 (2014-7-05 17:12:29)
PINK (2014-7-05 17:12:48)
请跑过大分子蛋白的高手多多给予指点,我的实验也碰到相似的问题。
ffaa (2014-7-05 17:13:16)
用普通的Tricine sds page行吗?
不知道这个等电点会不会有影响。
ffaa (2014-7-05 17:13:40)
用8%的胶跑一下.不行在试10%的
DDD (2014-7-05 17:13:55)
For Western Blot, you'd better check out that the problem is from RUNNING a gel or WESTERN process.
Suggestion:
1. Comassie staining to check if your target protein is really on the gel, and in the correct molecular weight;
2. Set up a positive control to make sure your Western Blot trans-membrane condition really works.
junjie05 (2014-7-05 17:14:11)
我最大做过200KD的蛋白,给你几点建议,希望对你有所帮助:
1.没有蛋白一个可能是跑的时间太长,胶太稀,蛋白跑丢了,另一个可能就是蛋白分子量太大根本就没有跑下来。前一种情况可以通过MARKER来确定,后一种情况可以通过考马斯亮蓝染胶来确定。
2.如果是后一种情况可能只有通过配更低浓度的分离胶来解决了,或者做梯度电泳。
3.5%的胶并不容易碎,注意操作
INK (2014-7-05 17:14:44)
你可用琼脂糖跑一下试一试,一般这么大的分子量在PAGE上很难跑下来.我开始也跑过,现在也改了,觉得还行.
XYZQ (2014-7-05 17:15:24)
greenbee (2014-7-05 17:16:23)
请问如果这样长(甚至可以更长)时间跑胶的话,会不会有什么影响呢?有没有战友碰到过这种情况呢?很是疑惑!
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