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【求助】如何提取贴壁细胞中的总RNA?
【求助】如何提取贴壁细胞中的总RNA?
各位同仁:我正准备用贴壁细胞做real time PCR,之前做组织时是用TRIZOL提的总RNA,不知细胞中的RNA提取方法是否也类似?具体有些什么要求?请大家多多帮忙!祝圣诞快乐!
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【求助】如何提取贴壁细胞中的总RNA?
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字体: 小 中 大 | 打印 发表于: 2015-8-03 17:19 作者: yonger 来源: 分析测试百科网
最新回复
milkdog (2015-8-03 17:19:46)
可以用TRIZOLA提,说明书应该有详细介绍的
kewanqi2011 (2015-8-03 17:21:19)
yonger (2015-8-03 17:21:41)
请问用TRIZOL裂解时细胞的浓度大概是多少?是否需等细胞在6孔板中长满以后再加1mlTRIZOL?
gmt (2015-8-03 17:22:30)
绝对可以不用消化,直接裂解,我都做了N次了。细胞浓度和你养的细胞大小有关,有的细胞比较小,6孔板长满厚细胞数量能达到2-5×10的6次方,但若你养的细胞很不规则,单个细胞占的面积比较大的话,细胞数量就少了,一般作PCR 6孔板内的细胞就够了。细胞是否长满我觉得不是个问题,你在传代的时候细胞种的密度大一点,很快就长满了,留标本的时间是由你的处理因素决定的。
dog002 (2015-8-03 17:25:12)
chengjie79 (2015-8-03 17:25:34)
dior (2015-8-03 17:26:31)
我今天做的同上楼,12孔板提取RNA,OD值也很小,不知道原因在何处,之前做6孔板比今天的结果好。哪位高手赐教一下,应该注意什么?谢谢!
dior (2015-8-03 17:27:39)
PBS是应该用DEPC水配制的,还是普通的就可以?
DCS (2015-8-03 17:28:00)
pbs应该是用DEPC水配制的。
finger (2015-8-03 17:29:48)
除了细胞少,还跟你的提取过程有关,24孔板长满的的话,能获取的细胞量约10的6次访,按说也能提出来,因为我呈提过人的PBMC中的RNA,分离后得到的PBMC可能还没有10的6次访呢?但也提出来了,当你觉得细胞量少时,最后加DEPC水溶解时就少加点(加10ul左右)我觉得你最后用6孔板提,若是新手,细胞量又很少,提不出来也很正常!我给你发一个我提RNA的步骤,你可以试一试!
finger (2015-8-03 17:30:08)
样品RNA的抽提
①取冻存已裂解的细胞,室温放置5分钟使其完全溶解。
②两相分离 每1ml的TRIZOL试剂裂解的样品中加入0.2ml的氯仿,盖紧管盖。手动剧烈振荡管体15秒后,15到30°C孵育2到3分钟。4°C 下12000rpm离心15分钟。离心后混合液体将分为下层的红色酚氯仿相,中间层以及无色水相上层。RNA全部被分配于水相中。水相上层的体积大约是匀浆时加入的TRIZOL试剂的60%。
③RNA沉淀 将水相上层转移到一干净无RNA酶的离心管中。加等体积异丙醇混合以沉淀其中的RNA,混匀后4°C孵育10分钟后,于4°C下12000rpm 离心10分钟。此时离心前不可见的RNA沉淀将在管底部和侧壁上形成胶状沉淀块。
④RNA清洗 移去上清液,每1mlTRIZOL试剂裂解的样品中加入至少1ml的75%乙醇(75%乙醇用DEPC H2O配制,最好现用现配),清洗RNA沉淀。混匀后,4°C下7000rpm离心5分钟。
⑤RNA干燥 小心吸去大部分乙醇溶液,使RNA沉淀在室温空气中干燥5-10分钟(不要过分干燥)。
⑥溶解RNA沉淀 溶解RNA时,先加入无RNA酶的水10-40μl(依据RNA的沉淀块,若看不见沉淀,加10-20ul)用枪反复吹打几次,使其完全溶解,获得的RNA溶液保存于-80°C待用。
finger (2015-8-03 17:30:41)
PBS最好是用DEPC水配制的,但普通的影响也不大,因为刚开始清洗细胞,清洗以后要用TRIZol裂解呢?此后的步骤均要求无RNA酶了,所以加TRIZol前影响不是很大。
baidukk (2015-8-03 17:30:58)
am10 (2015-8-03 17:31:15)
Trizol处理前细胞是活的,没必要用无RNase的PBS,到了Trizol一步时一切都解决了。
caihong (2015-8-03 17:31:33)
2.1.2 贴壁培养细胞
1) 倒出培养液,用1×PBS 清洗一次。
2) 按每10 cm2 生长细胞加2 mL TRIzol,水平放置片刻,使裂解液均匀分布于细胞表面并裂解细胞,用移液枪吹打细胞使其脱落(对于贴壁牢固的细胞用细胞刮刮离表面)。
3) 将裂解液及细胞转移至一离心管中,用一次性注射器反复抽打直至裂解液清澈透明不粘稠。
4) 在15~30℃放置5 min1) 向裂解液中加入氯仿,盖紧离心管盖,用力震荡离心管(溶液充分乳化,成乳白状,无分相现象),在15~30℃放置3 min(由于氯仿沸点低、易挥发,振荡时离心管可能爆开,小心)。
2) 于4℃,12000 g,离心15 min(加速度:减速度=9:1)。
3) 从离心机中小心地取出离心管,吸取体积约为TRIzol 试剂起始加入量一半的上清至另一无RNA 酶的离心管(切忌吸动白色中间相)。
4) 向上清加入异丙醇,轻轻颠倒离心管充分混匀液体,在15~30℃放置10 min(如果没有明显沉淀,可以-20 度过夜)。
5) 于4℃,12000 g,离心10 min(加速度:减速度=9:1)。
1) 小心弃去上清,缓慢地沿管壁加入75%乙醇1mL(切勿触及沉淀),轻轻颠倒洗涤离心管管壁,小
心弃去乙醇。
2) 再加入75%乙醇1 mL,在涡旋器上短暂涡旋(使沉淀悬浮于75%乙醇水中);于4℃,8000 g 离心
10 min。
3) 小心弃上清,短暂离心,用枪吸去所有上清,在超净工作台中干燥沉淀5 min 使乙醇挥发。
4) 加入适量的RNase-free Milli-Q,用枪吸取Milli-Q 水轻轻吹打沉淀,使其悬浮于Milli-Q 水中,50℃保温10 min,待RNA 沉淀完全溶解后,-80℃保存。
5) 一般来说,总RNA 沉淀应该快速地溶于Milli-Q 水中(正常的现象是,沉淀在Milli-Q 水中快速旋转并且同时溶解)。但是,某些RNA 沉淀,可能在悬浮于Milli-Q 水10 min 后仍有固体物存在,则于4℃,12000 g,离心10 min(加速度:减速度=9:1)后,转移上清至另一1.5 mL 离心管-80℃保存。剩余的固体物加入Milli-Q 水后也保存于-80℃。
6) 一般说来,用TRIzol 提取到的总RNA 中盐含量是比较高的,因此沉淀的洗涤非常重要。上清和管壁上残留的液体要尽量除去干净。
Ao7 (2015-8-03 17:31:51)
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痛风
抽提RNA的步骤大致类似,现在也有现成的试剂盒,如果实验条件允许可以直接购买,稳定性很好。我用的是QIAGEN的。但实验室也有用Trizol抽提的,效果也不错。
其实我觉得抽提RNA最重要的是,每一步都要特别“干净”。与RNA接触的任何器具都须是RNase free的。在抽提过程中最好戴上口罩,在专用的工作台进行操作,不要说话,尽量避免剧烈的空气流动。原则就一条,RNAase无处不在,而RNA非常脆弱,更要小心呵护才是。
遵循“干净”的原则,基本上按照相关步骤操作都能抽提出来。我第一次做是在关了通风的超净台里做的,虽然被师兄师姐们认为是有点小题大做,但抽提的质量和数量都非常好。
以上意见供楼主参考Smile
yonger (2015-8-03 17:32:59)
newway (2015-8-03 17:33:27)
各位好,本人培养的是大鼠原代心肌细胞,提取了6次rna,效果都不甚理想,5s带比较明显。我想问问,死细胞粘附在活细胞上过多对提取有没有什么影响,会不会使降解速度增加。我已经找不到其他问题了,真是郁闷!!!
caihong (2015-8-03 17:33:54)
我提醒一下:楼主用的TRIzol是什么公司的?
我用的是正宗Invitrogen公司的TRIzol,做的细胞都没什么问题……
曾经用过“晶*”公司的TRIzol就不行……不要相信哪个公司的TRIzol都一样的话……
zhihui小新 (2015-8-03 17:34:13)
【求助】如何提取贴壁细胞中的总RNA?